实验动物的处死方法

　　巴比妥类麻醉剂适用于兔、豚鼠,用药量为深麻醉剂量的25倍左右。一般用量为90 mg/kg,约15 min内死亡。该类药物能抑制丙酸氧化酶系统,从而抑制中枢神经系统(特别对大脑皮质及下丘脑),使反射机能逐渐消失[9]。也有人称用麻醉方法处死实验动物不应称为安乐死,这是按照设定程序“必须将其适时处死”,选用了无痛方法[10],在应用上还存在争议。
　　DDT适用于豚鼠、兔、犬。豚鼠致死量为3.0~4.4 mg/kg,家兔为0.5~1.0 mg/kg,犬为0.3~0.42 mg/kg[11]。豚鼠皮下注射,家兔和犬静脉注射。其机理可能与DDT 损伤细胞修复和免疫抑制有关,并能诱导肝微粒体酶系统,使某些酶发生抑制,而且本身经肝代谢而表现肝毒性作用[12]。
　　3特殊实验动物的处死
　　处死昆虫一般用烫死法,快速,可避免昆虫挣扎或人的抓捏而造成虫体的损伤。很多直翅目昆虫的腿可能会因剧烈的抽搐而脱落,可在制作昆虫标本时用万能胶粘上去,不会影响虫体的完整和美观[13]。处死青蛙时可用酒精麻醉,用镊子夹取一浸透95%酒精的棉球,塞入青蛙口腔中,三四分钟后,青蛙便瘫倒不动,效果极佳。也可用香烟麻醉,向装有青蛙的瓶里吹几口烟,盖紧瓶盖,几分钟后,青蛙瘫倒不动[14]。狐的处死方法为将人用氯化琥珀酞胆碱针剂1支(2 L,内含100 mg)稀释100倍,注入其心脏中,狐在10~60 s内昏迷,4~7 min内死亡,昏迷后即可取皮[15]。
　　随着时代的进步与发展,科学工作者在从事生命科学研究时,对待实验动物,越来越考虑到动物福利的问题。动物福利是社会进步和经济发展到一定阶段的必然产物,体现了人与动物协调发展的趋势。应爱护和善待实验动物,树立人性化的实验精神。这样不仅能保证实验动物的质量,确保实验结果的可靠性和准确性,还能培养良好的临床心理,实现人性化的实验与教学。
　　4参考文献
　　[1] 罗勇,付岷雪.再论安乐死[J].求实,2009(1):99-101.
　　[2] 孙敬芳.动物实验方法学[M].北京:人民卫生出版社,2001:272.
　　[3] 李凤奎,王纯耀.实验动物与动物实验方法学[M].郑州:郑州大学出版社,2007:341.
　　[4] LIAPI C,FESKOU I,ZARROS A,et al.Equilibrated diet restores the effects of early age choline-deficient feeding on rat brain antioxidant status and enzyme activities:the role of homocysteine[J].l -phenylalanine and l -alanine Metabolic Brain Disease,2008,23(3):112-114.
　　[5] 张潇,谭德讲,李保文,等.二氧化碳安乐死在实验动物中的应用与最新进展[J].中国比较医学杂志,2009(8):81-84.
　　[6] 赵建文,银欢,张志芬,等.安乐死箱的技术条件的研究[J].实验动物科学,2007(3):54-55.
　　[7] 林宗武,洪涛,宋凯,等.经静脉注射高钾溶液对心脏功能和心肌结构的影响[J].复旦学报:医学版,2006,33(3):320-323.
　　[8] OKADA K Y C.Successful 24-hour rabbit heart preservation by hypo-thermic continuous coronary microperfusion with oxygenated[J].Unive-rsity of Wisconsin Solution,1995,20(6):6.
　　[9] 郭文,王丽.巴比妥类药物的耐受性和依赖性机理的研究进展[J].国外医学:药学分册,1999,26(2):98-100.
　　[10] 本刊编辑部.用麻醉方法处死实验动物不应称为安乐死[J].中国超声医学杂志,2009(1):643.
　　[11] 何诚.实验动物学[M].北京:中国农业大学出版社,2006:347.
　　[12] 韩中明,李章,乌垠.乙醇与DDVP或DDT对大鼠的联合毒理作用[J].吉林大学学报(医学版),1990,16(6):559-561.
　　[13] 郭红香.处死昆虫的五种方法[J].生物学教学,2000,25(6):36.
　　[14] 孙智敏,袁爱荣.处死青蛙的方法[J].生物学通报,1990(1):37.
　　[15] 心脏注射氯化琥珀酰胆碱处死狐效果好[J].现代畜牧兽医,1991(2):40.