汉防己甲素对白血病耐药细胞株K562/A02核因子κB表达的影响
【摘要】 通过研究汉防己甲素(tetrandrine, Tet)对白血病细胞株K562及其耐药细胞株K562/A02核因子κB(nuclear factor?kappaB,NF?κB)表达的影响,探讨Tet逆转多药耐药的作用机制。方法:采用免疫细胞化学及蛋白印迹法分别检测1 μmol/L Tet作用K562和K562/A02细胞6 h和12 h后,细胞NF?κB核转位水平和胞核NF?κB蛋白表达的变化。结果:Tet作用6 h和12 h后,对K562细胞的NF?κB核转位水平及胞核NF?κB蛋白表达均无明显影响(P>0.05);K562/A02细胞NF?κB核转位水平及胞核NF?κB蛋白表达明显高于K562细胞对照组(P<0.01);Tet作用6 h和12 h后,可明显降低K562/A02细胞NF?κB蛋白核转位(P<0.05)和胞核NF?κB蛋白表达水平(P<0.01),作用12 h较作用6 h效果更显著(P<0.05)。结论:1 μmol/L Tet可能通过抑制NF?κB活化逆转K562/A02细胞多药耐药性。
【关键词】 白血病 多药耐药 防己甲素 核因子κB
Objective: To investigate the effects of tetrandrine (Tet) on nuclear factor kappaB (NF?κB) expression in leukemia cell line K562 and multidrug?resistant K562/A02 cell line.
Methods: The activations of NF?κB in K562 and K562/A02 cells and the effects of 1 μmol/L Tet on NF?κB expression were determined by immunocytochemistry and Western blot assay.
Results: Tet had no effect on NF?κB expression in K562 cells after 6? and 12?hour treatment (P>0.05), and K562/A02 cells displayed higher level of NF?κB protein expression than their parental K562 cells (P<0.01). Tet could significantly down?regulate NF?κB protein expression and nuclear translocation in K562/A02 cells shown by immunocytochemistry and Western blot, and this decrease became more significant after 12?hour treatment than after at 6?hour treatment (P<0.05).
Conclusion: Activation of NF?κB may be related to multidrug resistance of K562/A02 cell line. And the inhibition of NF?κB activation by Tet leads to multidrug resistance reversal in K562/A02 cell line.
Keywords: leukemia; multidrug resistance; tetrandrine; nuclear factor kappaB
肿瘤耐药是当今肿瘤的一大难题,一直是国内外研究的热点。肿瘤耐药的发生是多种机制共同作用的结果,其机制之一是调节细胞凋亡相关因子导致凋亡抵抗,如活化NF?κB、Bcl?2、突变型p53等[1]。克服和干预肿瘤细胞耐药是提高肿瘤疗效的重要手段。中药汉防己科植物粉防己具有行水和泻下焦湿热的功效,用于治疗水肿臌胀、湿热脚气、手足痉挛等[2]。汉防己甲素(tetrandrine, Tet)是从粉防己块根中提取的生物碱,研究证实Tet是天然的非选择性钙通道阻滞剂,又是钙调蛋白拮抗剂,临床用于逆转多药耐药(multiple drug resistance, MDR)时耐受性较好,无明显副作用[3?5]。核因子κB(nuclear factor?kappaB,NF?κB)是分布和作用十分广泛的真核细胞转录调控因子,其与肿瘤发生、浸润转移以及肿瘤多药耐药有密切关系,可能成为提高肿瘤化疗效果的治疗新靶点[6]。
本课题组既往的实验已证实,Tet能有效逆转慢性粒细胞白血病急性红白血病变细胞耐药株K562/A02对化疗药物柔红霉素的耐药性;它逆转耐药可能与下调mdr1基因及P?糖蛋白(P?glycoprotein, P?gp)的表达,改变细胞内钙离子浓度[Ca2+]i,下调bcr/abl基因等有关[7, 8]。为进一步了解该药逆转耐药的作用机制,本实验将检测Tet对NF?κB表达的影响,为该药作为耐药逆转剂应用于临床提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 细胞株及来源 人慢性粒细胞白血病急性红白血病变细胞株K562购自院上海细胞生物学研究所。人慢性粒细胞白血病急性红白血病变阿霉素(adriamycin, ADM)耐药细胞株K562/A02购自中国医学科学院血液病研究所。
1.2 主要仪器及试剂 免疫组化SP检测试剂盒,为北京中山生物技术有限公司产品;蛋白提取试剂盒为Active Motif公司产品;蛋白质定量测定试剂盒为Pierce公司产品;Western blot试剂盒为KPL公司产品;中分子量标准蛋白质为Fermentas Life Science公司产品;β?actin为Amresco公司产品;抗NF?κB p65抗体(产品货号:sc?8008, sc?372)及辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG均为Santa Cruz公司产品。图像分析处理系统:ImageMaster VDS图像分析仪、ImageMaster 2D Platinum 5.0软件为Pharmacia公司产品。所有操作均按试剂盒说明书提供的方法进行。Tet注射液,30 mg/支(2 ml)为浙江康恩贝集团金华制药厂产品。
1.3 细胞培养及实验分组 K562细胞用含10%小牛血清的RPMI 1640培养液培养,K562/A02细胞在含10%小牛血清、1 μmol/L ADM的RPMI 1640培养液中培养,置于37 ℃、5% CO2培养箱中,每天换液,2~3 d传代一次。实验时取对数生长期细胞,用无血清RPMI 1640培养液静置6 h后,计数活细胞数,活细胞数90%以上时进行分组及干预,细胞密度按不同实验要求调整,实验重复3次。K562细胞和K562/A02细胞分别分组,即分为K562细胞对照组、K562细胞Tet 6 h组、K562细胞Tet 12 h组和K562/A02细胞对照组、K562/A02细胞Tet 6 h组、K562/A02细胞Tet 12 h组。本实验所采用的各药物剂量均系本课题组既往实验通过MTT法半数抑制浓度(50% inhibiting concentration, IC50)所得,其中1 μmol/L Tet为最佳有效逆转浓度,该浓度无细胞毒作用,用于实验。
1.4 NF?κB核转位免疫细胞化学染色及结果判断 操作按试剂盒说明书提供的方法进行,3?氨基?9?乙基咔唑(3?amino?9?ethylcarbazole, AEC)显色,PBS代替一抗作为阴性对照,以细胞核有红色颗粒者为阳性细胞,镜下随机选取5个高倍视野,计数500个细胞,计算胞核染色的阳性细胞占细胞总数的百分比。
1.5 Western blot检测NF?κB 操作按试剂盒说明书提供的方法进行,以BCIP/NBT显色,待出现清晰的蛋白条带时,终止显色反应。扫描滤膜并对电泳条带进行光密度分析。以65 ku处NF?κB蛋白条带与β?actin条带的比值作为各组实验数据,每组实验重复3次。
1.6 统计学方法 数据资料用x±s表示,用SPSS 11.0统计软件对数据进行统计分析,多组间比较采用单因素方差分析,两组间比较采用LSD?t检验。
2 结 果
2.1 免疫细胞化学测定Tet对细胞NF?κB蛋白核转位的影响
2.1.1 Tet作用于K562细胞后免疫细胞化学结果 镜下可见,K562细胞对照组细胞的胞浆、胞核均无着色,其余各组K562细胞胞浆均可见红色颗粒沉淀,活化的细胞NF?κB发生转位进入胞核,胞核也可见红色颗粒沉淀。Tet作用于K562细胞6 h和12 h后,细胞胞核NF?κB阳性率分别为(37.39±0.95)%和(40.81±0.79)%,与K562细胞对照组(39.64±0.92)%相比,差异无统计学意义(P>0.05)。
2.1.2 Tet作用于K562/A02细胞后免疫细胞化学结果 K562/A02细胞对照组NF?κB阳性细胞百分率为(65.03±4.18)%,与K562细胞对照组相比,差异有统计学意义(P<0.01)。与K562/A02细胞对照组比较,Tet作用于K562/A02细胞6 h和12 h后,NF?κB阳性细胞百分率均明显减少,分别为(52.65±1.12)%(P<0.05)和(45.89±2.04)%(P<0.01)。Tet作用于K562/A02细胞12 h的阳性细胞百分率低于作用6 h组(P<0.05)。
2.2 Western blot测定Tet对细胞NF?κB蛋白表达的影响
2.2.1 Tet作用于K562细胞后胞核NF?κB蛋白表达 Tet作用于K562细胞6 h和12 h后,NF?κB蛋白条带与β?actin条带的比值分别为2.260±0.073和2.299±0.021,与K562对照组(2.366±0.241)相比差异无统计学意义(P>0.05)。
2.2.2 Tet作用于K562/A02细胞后6 h胞核NF?κB蛋白表达 各组NF?κB蛋白条带与β?actin条带的比值分别为:K562/A02细胞对照组3.545±0.219、K562细胞对照组2.366±0.241、K562/A02细胞Tet 6 h组2.528±0.196(图1A)。K562/A02细胞胞核NF?κB蛋白表达水平明显高于K562细胞(P<0.01);Tet作用于K562/A02细胞6 h后,胞核NF?κB蛋白表达水平明显低于K562/A02细胞对照组(P<0.05)。
2.2.3 Tet作用于K562/A02细胞12 h胞核NF?κB蛋白表达 各组NF?κB蛋白条带与β?actin条带密度的比值分别为:K562/A02细胞对照组3.545±0.219、K562细胞对照组2.366±0.241、K562/A02细胞Tet 12 h组2.301±0.174(图1B)。Tet作用于K562/A02细胞12 h后,胞核NF?κB蛋白表达水平明显低于对照组(P<0.01),与作用6 h相比,降低更明显(P<0.05)。
3 讨 论
体内外实验已证实Tet逆转耐药作用[3?5],但作用机制不清是限制其临床应用的最大障碍,Tet逆转耐药机制是否与调节NF?κB活性相关尚无报道。本研究表明K562/A02细胞NF?κB表达水平高于K562细胞,Tet可降低K562/A02细胞NF?κB蛋白表达。
K562及K562/A02细胞均存在NF?κB活化,且K562/A02细胞NF?κB活化高于K562细胞,提示NF?κB活化与肿瘤发生及多药耐药形成有关,与近年国内外的相关报道一致[6]。Yeh等[9]用低剂量阿霉素诱导宫颈癌SiHa细胞的耐药性,发现诱导耐药的细胞SiHa/DR的NF?κB活性明显增加,并且抑制NF?κB活性后,其耐药性明显减弱,提示化疗药诱导的NF?κB活化是耐药发生机制之一。Chuang等[10]研究多个肿瘤细胞株的NF?κB活性,发现不同细胞的NF?κB活性主要与其耐药性相关。
Tet是否对K562和K562/A02细胞NF?κB活性有影响未见报道。Chen等[11]用不同浓度的Tet与脂多糖(lipopolysaccharide, LPS)或佛波醇酯(phorbol myristate acetate, PMA)共同作用于鼠巨噬细胞NR8383,发现Tet可抑制LPS或PMA诱导的NF?κB活化,并呈剂量依赖性。Tet降低K562/A02细胞NF?κB活性的机制不明。研究证实,Tet是一种钙通道阻滞剂和抗氧化剂,而钙通道路径和细胞的氧化还原在NF?κB活化中均起重要作用,Tet抑制NF?κB活性可能与干扰钙通道和(或)影响细胞的氧化还原状态有关[3]。
研究表明,抑制NF?κB活性可增加肿瘤细胞对化疗的敏感性[12, 13]。史剑慧等[14]发现高三尖杉酯碱0.5 μmol/L可明显诱导K562细胞NF?κB活化,地塞米松1 μmol/L和长春新碱0.1 μmol/L均能显著抑制高三尖杉酯碱诱导的NF?κB活化,并增强其诱导K562?n细胞凋亡的作用。
抑制NF?κB活性,国外常用的方法是将ser32/36或lys21/22位突变的IκB导入肿瘤细胞,或者给予蛋白酶抑制剂使NF?κB活化受阻,从而增加肿瘤细胞对化疗的敏感性[15]。寻找安全有效的NF?κB活化抑制剂对于克服肿瘤耐药具有重要意义,Tet可抑制K562/A02细胞NF?κB活性,不仅为其逆转耐药提供了理论依据,也为肿瘤耐药的研究提供了思路。
【】
1 N?rgaard JM, Hokland P. Biology of multiple drug resistance in acute leukemia. Int J Hematol. 2000; 72(3): 290?297.
2 Jiangsu New Medical College. Dictionary of Chinese Traditional Drugs (Part one). Shanghai: Shanghai Scientific and Technical Publishers. 1975: 791?795. Chinese.
江苏新医学院. 中药大词典(上册). 上海: 上海技术出版社. 1975: 791?795.
3 Xia W, Ao ZF, Zhu GR. An effective reversal agent of drug resistance in tumor cells??study on reversal of drug resistance by tetrandrine in leukemic cells. Nanjing Yi Ke Da Xue Xue Bao. 1995; 15(3): 543?546. Chinese with abstract in English.
夏薇, 敖忠芳, 朱广荣. 一种有效的肿瘤耐药逆转剂——汉防己甲素逆转白血病耐药的实验研究. 南京医科大学学报. 1995; 15(3): 543?546.
4 Ao ZF, Xia W. Reversal of daunorubicin resistance by tetrandrine in leukemic cells. Zhonghua Xue Ye Xue Za Zhi. 1995; 16(5): 235?237, 278. Chinese with abstract in English.
敖忠芳, 夏薇. 汉防己甲素逆转白血病细胞耐药的研究. 中华血液学杂志. 1995; 16(5): 235?237, 278.
5 Xu JY, Zhou Q, Shen P, et al. Reversal effect of TTD on human multidrug resistant KBV200 cell line. J Exp Clin Cancer Res. 1999; 18(4): 549?552.
6 Yang JY, Zeng XY, Ma BR. Effect of NF?κB pathway on apoptosis of hepatic carcinoma cell line?7721 induced by TNF?α. Ai Zheng. 2002; 21(9): 974?978. Chinese with abstract in English.
杨季云, 曾祥元, 马布仁. NF?κB信号传导途径对TNF?α诱导的SMMC?7721细胞凋亡的影响. 癌症. 2002; 21(9): 974?978.
7 Chen BA, Dong Y, Zhang P, et al. Reversal effect of tetrandrine in combination with droloxifene on cell line K562/A02 and the correlation with apoptosis induction. Dong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2002; 21(1): 28?32. Chinese with abstract in English.
陈宝安, 董颖, 张鹏, 等. 汉防己甲素联合屈洛昔芬逆转K562/A02细胞耐药的研究. 东南大学学报 (医学版). 2002; 21(1): 28?32.
8 Chen BA, Qian XJ, Cheng J, et al. Effect of tetrandrine combined with droloxifen on the expression of bcr/abl of K562 at both mRNA and protein levels. Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. 2005; 13(1): 95?99. Chinese with abstract in English.
陈宝安, 钱习军, 程坚, 等. 汉防己甲素联合屈洛昔芬对K562细胞bcr/abl表达的影响. 实验血液学杂志. 2005; 13(1): 95?99.
9 Yeh PY, Chuang SE, Yeh KH, et al. Involvement of nuclear transcription factor?kappa B in low?dose doxorubicin?induced drug resistance of cervical carcinoma cells. Biochem Pharmacol. 2003; 66(1): 25?33.
10 Chuang SE, Yeh PY, Lu YS, et al. Basal levels and patterns of anticancer drug?induced activation of nuclear factor?kappaB (NF?kappaB), and its attenuation by tamoxifen, dexamethasone, and curcumin in carcinoma cells. Biochem Pharmacol. 2002; 63(9): 1709?1716.
11 Chen F, Sun S, Kuhn DC, et al. Tetrandrine inhibits signal?induced NF?kappa B activation in rat alveolar macrophages. Biochem Biophys Res Commun. 1997; 231(1): 99?102.
12 Sumitomo M, Tachibana M, Nakashima J, et al. An essential role for nuclear factor kappa B in preventing TNF?alpha?induced cell death in prostate cancer cells. J Urol. 1999; 161(2): 674?679.
13 Romano MF, Lamberti A, Bisogni R, et al. Enhancement of cytosine arabinoside?induced apoptosis in human myeloblastic leukemia cells by NF?kappa B/Rel? specific decoy oligodeoxynucleotides. Gene Ther. 2000; 7(14): 1234?1237.
14 Shi JH, Xu XP, Zhang ZL, et al. Inhibition of activation of nuclear factor?κB enhanced apoptosis of leukemic cells induced by homoharringtonine. Zhonghua Nei Ke Za Zhi. 2003; 42(5): 292?295. Chinese with abstract in English.
史剑慧, 许小平, 张宗梁, 等. 核因子?κB活化抑制增强高三尖杉酯碱诱导白血病细胞凋亡. 中华内科杂志. 2003; 42(5): 292?295.
15 Cusack JC Jr, Liu R, Houston M, et al. Enhanced chemosensitivity to CPT?11 with proteasome inhibitor PS?341: implications for systemic nuclear factor?kappaB inhibition. Cancer Res. 2001; 61(9): 3535?3540.