三氧化二砷对MRL/lpr狼疮鼠基因甲基化的影响
作者:周艳 孙莉 陈丹 朱小春
【关键词】 三氧化二砷 MRL/lpr 狼疮鼠基因 甲基化
系统性红斑狼疮(systemic lupus erythematosus,SLE)是最常见、最严重的自身免疫性疾病之一,重症狼疮的效果目前仍不理想,因此,国内外学者都在寻求新的有效药物和新的治疗方法。三氧化二砷在临床上应用于白血病治疗已有多年,并有明显疗效。近年来有将三氧化二砷(ATO)用于狼疮鼠的治疗,取得了一定的疗效[1~3]。本研究应用动物实验观察ATO对SLE模型自身免疫及基因甲基化的影响,旨在探讨ATO在红斑狼疮中的治疗价值及其作用机制。
1 材料和方法
1.1 实验动物的分组及处理 12周龄MRL/lpr小鼠24只(购自院上海实验动物中心,雌雄各半),随机分为ATO组和生理盐水(NS)组,各12只,ATO组隔日腹腔注射ATO0.4 mg·kg-1·d-1,NS组隔日腹腔注射生理盐水,疗程60d。另将20只12周龄C57雄鼠随机分为ATO组和NS组,各10只,处理同上。
1.2 试剂、材料 三氧化二砷、鲑鱼精DNA及碱基标准品[腺嘌呤(A)、鸟嘌呤(G)、胞嘧啶(C)、5-甲基胞嘧啶(5mC)及胸腺嘧啶(T)]购自Sigma公司,HRP标记的山羊抗小鼠IgG购自北京中山生物科技公司,基因组DNA抽提试剂盒购自碧云天生物技术研究所,96孔酶标板购自Costar公司。
1.3 检测项目及方法 (1)抗dsDNA抗体水平测定[4]:ELISA方法测定用鲑鱼精DNA包被96孔酶标板,待测血清均作1:100稀释,结果在酶联免疫检测仪450nm处读出OD值。(2)DNA甲基化水平测定:DNA抽提及水解:使用试剂盒对各样品进行提取和纯化DNA,将约100μg基因组DNA和100μL氢氟酸混匀, 80℃水温育12h,然后于40℃烘箱至液体完全蒸发,随后加入0.02 mol/L,pH 2.3的NH4H2PO4 100μL;色谱条件及甲基化水平测定:Agilent1100高效液相色谱仪,色谱柱:25cm×4.6mm,5μm,Hypersil ODS C18反相色谱柱,柱温为20℃,以0.02 mol/L、pH2.3的NH4H2PO4为流动相,流速为1.2ml/min,检测波长为280nm,进样量为20μl,先用流动相平衡色谱柱至基线平稳,开始将5种碱基标准品:(A、G、C、5mC、T)分别进样,工作站软件处理后得出峰形和每种标准品的持留时间,即可确定各种碱基流出顺序,再将样品逐个进样,得出峰形和数据后根据C和5mC的峰下面积按公式DNA甲基化水平(%) = 5mC/(5mC+C)×100 %,求得DNA甲基化水平。(3)血常规测定:应用SYSMEX KX21对各组小鼠外周血进行检测。
1.4 统计学方法 采用SPSS 13.0统计软件,资料用(x±s)表示,两样本均数比较采用t检验。以P<0.05为差异有显著性。
2 结果
2.1 MRL/lpr小鼠治疗前后抗dsDNA抗体水平的变化 在给药前ATO组和NS组的抗dsDNA抗体水平并无明显差异。治疗后ATO组小鼠的抗dsDNA抗体水平较NS组明显降低(P<0.01)。见表1。
表1 ATO对MRL/lpr小鼠治疗前后抗dsDNA抗体的影响(略)
注:与给药前比较,*P<0.01;与NS组比较,△P<0.01
2.2 治疗后两组MRL/lpr小鼠各脏器重量比较 实验结束时称取脾脏、胸腺、两侧腋窝及颈部淋巴结的重量。ATO组脾脏的重量较NS组明显减轻(P<0.05)。ATO组总淋巴结的重量较NS组也明显减轻(P<0.05),而胸腺重量两组未见明显差异。见图1。
2.3 治疗后两组MRL/lpr小鼠DNA甲基化水平的比较 图2、3分别为ATO组和NS组小鼠脾脏DNA裂解后的高效液相图谱,图中基线平稳,可见清晰的5个吸收峰,按流出顺序分别为C、5mC、G、T、A。结果显示,ATO组脾脏DNA甲基化水平(3.78±0.81)%,NS组(2.16±0.42)%;ATO组淋巴结DNA甲基化水平(2.38±0.54)%,NS组(1.71±0.24)%,ATO组脾脏及淋巴结的DNA甲基化水平较NS组有明显的升高(P<0.05),而血液与胸腺的甲基化水平两组相差不大(P>0.05),见图4。
2.4 治疗后MRL/lpr、C57小鼠外周血细胞计数比较 在实验结束时测定四组小鼠的血常规,结果显示ATO治疗后MRL/lpr及C57小鼠的红细胞、白细胞、血红蛋白与NS组相比并无明显差异,而MRL/lpr小鼠ATO组血小板较NS组有明显升高(P<0.05),见表2。
表2 ATO对MRL/lpr及C57小鼠血常规的影响(略)
注:与NS组比较,*P<0.05
3 讨论
MRL/lpr小鼠是常用的SLE动物模型之一,3月龄左右发病,发病后出现脾脏及全身淋巴结肿大,出现抗dsDNA抗体及免疫复合物相关性肾炎,临床和病理表现与人类SLE类似,为此,将其作为探索SLE 新治疗方法的实验对象。
抗dsDNA抗体是SLE重要的自身抗体之一,也是SLE活动的指标。本研究结果示MRL/lpr小鼠经ATO2个月后,血清抗dsDNA抗体水平比NS组明显下降(P<0.01),故认为ATO能抑制MRL/lpr小鼠血清中抗dsDNA抗体的产生,从而控制狼疮的活动。
本研究发现,ATO组小鼠脾脏及淋巴结的重量较NS组明显降低,这与Bobé 等[1]的研究结果相同。全身淋巴结肿大为MRL/lpr小鼠发病的临床表现之一,亦是SLE疾病活动的表现。而淋巴结和脾脏均为重要的免疫器官,是发生免疫应答及合成免疫活性物质的重要场所。有研究已证实亚砷酸(ATO水溶液)能使BXSB狼疮鼠脾脏总T淋巴细胞减少[5],因此推测ATO可能通过抑制狼疮鼠淋巴组织增生,从而减少体内自身抗体产生,使病情得到缓解。
SLE的发病机制至今仍不明确,近年有研究发现SLE患者普遍有基因组DNA甲基化水平降低,且SLE的活动程度与DNA甲基化水平呈负相关[6]。部分患者在接受肼苯达嗪等甲基化抑制剂治疗后发生狼疮样综合征。本实验结果显示ATO治疗后MRL/lpr小鼠脾脏及淋巴结的甲基化水平较NS组有明显升高。脾脏和淋巴结为主要的外周免疫器官,是T、B淋巴细胞居住的重要场所,也就是说ATO能提高外周T、B淋巴细胞的DNA甲基化水平。T细胞DNA低甲基化可以导致多种基因异常表达如干扰素(IFN)- γ[7]、白介素(IL)-4[8]等,而这些细胞因子在B细胞的激活及抗体的产生中均具有重要的作用。以往实验已证实ATO能抑制BXSB小鼠脾IFN-γ的表达[3],在体外ATO还能抑制MRL/lpr小鼠CD4+T细胞IFN-γ和IL-4的表达,且有报道,IFN-γ和IL-4基因启动子低甲基化是导致两者转录表达升高的主要机制。回顾近几年的研究,发现ATO能促进bcl-2基因启动子和Caco-2细胞基因组DNA的高甲基化,且甲基化程度与砷的剂量呈正相关,提示砷剂能通过改变DNA甲基化水平来调控着某些基因的转录。因此作者推论ATO可能主要通过提高基因甲基化水平,而减少狼疮小鼠体内多种与免疫激活有关的细胞因子的表达,从而达到抑制免疫与缓解SLE的病情。
砷剂应用于临床后,人们对其安全性方面关注较多。本实验中观察到治疗期间ATO组MRL/lpr及C57小鼠体重、食量、毛色、活动情况均较NS组无明显差异,治疗后两组MRL/lpr及C57小鼠的外周血白细胞、红细胞等数值均无明显差异。由此认为,治疗剂量的ATO在SLE诱导期治疗2个月是安全的。
综上所述,ATO能提高MRL/lpr小鼠的脾脏与淋巴结DNA甲基化水平,降低其血清抗dsDNA水平并抑制淋巴组织的增生,显示ATO对SLE具有一定的治疗作用。据此推测ATO可能通过对提高基因的甲基化水平,抑制IFN-γ、IL-4等相关基因的表达,从而达到抑制机体免疫的功能。本实验中明确了各器官DNA甲基化的整体水平,但ATO是否是通过改变IFN-γ、IL-4等因子启动子的甲基化及通过何种机制改变基因甲基化水平,仍需今后进一步研究。
【】
1 Bobé P,Bonardelle D.Arsenic trioxide: A promising novel therapeutic agent for lymphoproliferative and autoimmune syndromes in MRL/lpr mice.Blood,2006, 108(13):3967~3975.
2 XIA xiao Ru,XU Hong,ZHU Xiao Chun. Effects of arsenic trioxide on survival rate and autoimmune response of lupus mice. Chin J Pharmacol Toxico, 2007, 21 (6): 482~486.
3 朱小春,金晓冬,黄朝兴,等.三氧化二砷对BXSB自发狼疮鼠血清自身抗体与肾小球免疫球蛋白沉着的影响.中华内科杂志,2001,40(11): 764~765.
4 高建新,马宝骊,张汉明.空肠诱导的自身抗体产生动力学.免疫学杂志,1991,7(1) :7~10.
5 朱小春,张文辉,高申孟,等.三氧化二砷对自发性狼疮BXSB小鼠免疫系统的影响.中华风湿病学杂志,2002,6(5):343~346
6 徐晓龚,周卫华,肖传实,等.系统性红斑狼疮患者基因组DNA甲基化水平的初步研究.中华风湿病学杂志,2005,9(2):94~96.
7 Bonilla-Henao V, Martínez R, Sobrino F. Different signaling pathways inhibit DNA methylation activity and up-regulate IFN-gamma in human lymphocytes. J Leukoc Biol, 2005, 78(6):1339~1346.
8 Mi XB, Zeng FQ.Hypomethylation of interleukin-4 and -6 promoters in T cells from systemic lupus erythematosus patients.Acta Pharmacol Sin, 2008,29(1):105~112.