17β雌二醇对人桡动脉舒张作用的体外实验

来源:岁月联盟 作者: 时间:2010-07-12

                                     作者:苏海川,赵玉红 ,韦耿泽,陈军,李陕区 

【摘要】  目的: 研究17β雌二醇(17β?estradiol, E2)对人桡动脉(RA)的舒张作用及其机制. 方法: 采用离体血管灌流的方法,观察E2对人RA的舒张作用以及NO合成酶抑制剂左旋硝基精氨酸甲酯(Nω?nitro?L?arginine methyl ester, L?NAME),8?Br?cGMP和鸟苷酸环化酶抑制剂美蓝(MB)对这一过程的影响. 结果: 观察到E2(0.1~100 μmol/L)可剂量依赖性地舒张血管且具有内皮依赖性;8?Br?cGMP(0.1~1×103 μmol/L)也可引起剂量依赖性的血管舒张效应. 10 μmol/L MB使E2舒张人RA的作用完全消失. 10 μmol/L L?NAME能部分抑制E2舒张TA的作用. 结论: E2对RA的急性舒张作用具有内皮依赖性. 此作用是E2通过非基因组方式使血管内皮细胞分泌NO、进而可能引起血管平滑肌细胞内的cGMP水平升高实现的.

【关键词】  雌二醇;桡动脉;一氧化氮; 环GMP

 0引言
    
  绝经前妇女心血管疾病发病率明显低于同龄男性和绝经后妇女,说明雌激素具有很强的心血管保护作用[1]. 动物研究表明,雌激素能够通过非基因组途径快速舒张血管,雌激素的快速舒血管作用可能是雌激素促进了血管内皮细胞释放NO,进而抑制平滑肌细胞的收缩[2]. 有报道,雌激素可以直接抑制血管平滑肌细胞的收缩作用,产生舒血管作用[3]. 然而,雌激素作用于血管的确切机制还未完全清楚,雌激素对人动脉的作用及其机制也少见报道. 我们采用离体灌流人桡动脉环,观察雌激素对保留内皮和去内皮血管的急性舒张作用,并进一步研究这种舒张血管的作用机制.

  1材料和方法

  1.1材料人桡动脉由西京心血管外科取材自10例行冠状动脉旁路移植术的男性患者,年龄45~65 (55±8)岁. 17β雌二醇、左旋硝基精氨酸甲酯(Nω?nitro?L?arginine methyl ester, L?NAME)、美蓝(MB)、8?Br?cGMP、去甲肾上腺素(NE)(美国Sigma公司). RM?6280多道智能生理记录及分析处理系统(第四军医大学生物医学工程系).

  1.2方法

  1.2.1主要药物配制17β雌二醇用DMSO配制成10 mmol/L的原液,实验前用Kreb?s 液稀释成工作液. L?NAME,MB用去离子水配成10 mol/L原液,实验时加入Kreb?s 液,工作浓度为10 μmol/L. 8?Br?cGMP直接用Kreb?s 液配成工作液(0.1~1000 μmol/L). Kreb?s 液成分(mmol/L):NaCl 118, KCl 4.75, CaCl2 2.54, KH2PO4  1.19, MgSO4  1.19, NaHCO3 25,  葡萄糖10,充以含950 mL/L O2和50mL/L CO2的混合气,用HCl调pH至7.2~7.4.
 
  1.2.2离体血管环灌流将游离的RA放入到预冷、充以含950 mL/L O2和50 mL/L CO2  Kreb?s 液中,仔细去除血管上的脂肪及结缔组织,将动脉剪成2~3 mm的小段,然后将血管环套在不锈钢小钩上,放入37℃, 充以含950 mL/L O2和50 mL/L CO2的Kreb?s 液中, 并连接在张力传感器上. 给血管环加0.5 g的前负荷,在Kreb?s 液中平衡至少120 min以上,在此过程中,孵育血管环的液体每15 min换1次,并使前负荷维持在0.5 g. 加入10 μmol/L的NE检测标本活性(收缩幅度小于500 mg者弃去),然后冲洗使血管张力恢复到基线. 稳定30 min后重复给予NE,待血管收缩达到稳定值时逐步增加E2的浓度(0.1~100 μmol/L). 去内皮采用细钢丝插入血管腔中滚动完成. 用10 μmol/L的乙酰胆碱(Ach)对血管环是否有舒张反应作为判断血管内皮是否完整的标准.

  统计学处理:   血管环的例数n等于提供血管的患者数. 以NE对血管环收缩的最大效应为100%. 制作累积浓度?舒张反应曲线,求出最大舒张反应值(Rmax)和血管最大舒张的半数有效浓度(EC50). 统计学处理采用组间t检验, P<0.05为差异显著.

  2结果

  2.1E2对人桡动脉的作用人桡动脉血管环用1 μmol/L的NE产生张力,待稳定后加入E2 (0.1~100 μmol/L).  数据用1 μmol/L NE预收缩的血管舒张到未加药前的百分数表示. NE使保留内皮或去内皮的HIMA收缩后,E2可引起剂量依赖性的舒张效应,且具有内皮依赖性(图1).

  图 1E2对人桡动脉舒张的量效关系(略)

  2.28?Br?cGMP对人桡动脉的作用人桡动脉血管环用1 μmol/L NE产生张力,待稳定后,加入8?Br?cGMP (0.1~1000 μmol/L). 数据用1 μmol/L NE预收缩的血管舒张到未加药前的百分数表示. NE使RA收缩后,8?Br?cGMP可引起剂量依赖性的舒张效应(图2),8?Br?cGMP的浓度为1000 μmol/L时,Rmax=(90±8)%,EC50=-4.7±0.3(log10mol/L).

  图28?Br?cGMP对人桡动脉舒张的量效关系(略)

  2.3L?NAME对E2舒张人桡动脉的影响人乳内动脉血管环用1μmol/L NE产生张力,待稳定后加入E2 (1×10-4~1 μmol/L). 一些血管环在加入E2之前20 min用L?NAME(10 μmol/L)预处理,数据用1 μmol/L NE预收缩的血管舒张到未加药前的百分数表示. L?NAME可以使E2舒张RA的作用完全消失(图3).

  图3L?NAME和 MB对E2舒张人乳内动脉效应的影响(略)

  2.4MB对E2舒张人桡动脉的影响人乳内动脉血管环用1 μmol/L NE产生张力,待稳定后加入E2 (1×10-4~1 μmol/L). 一些血管环在加入E2之前20 min用MB (10 μmol/L)预处理,数据用1 μmol/L NE预收缩的血管舒张到未加药前的百分数表示. 10 μmol/L的MB可以使VNP舒张HIMA的作用完全消失.

  3讨论
 
  E2的急性舒血管作用为非基因组机制,雌激素受体α和β都可能参与其中,以往报道,其效应呈内皮依赖性和内皮非依赖性,NO在雌激素的舒血管作用中起关键的作用[4-5]. NO分泌后可以激活血管平滑肌细胞中的GC,使细胞内cGMP浓度升高,进一步激活PKG,产生舒血管作用[6]. 这些研究是以动物为研究对象得到的实验结果,而E2对人桡动脉的作用还少见报道. 本实验采用冠状动脉旁路移植术使用的桡动脉来观察E2对其的作用.


  
  我们的结果显示:E2对人RA的舒张为内皮依赖性的,而NOS抑制剂L?NAME可以完全抑制E2的舒张作用,说明雌激素的急性舒血管作用依赖于血管内皮分泌的NO. GC抑制剂MB抑制E2对RA的舒张作用程度与L?NAME大致相等,用cGMP类似物8?Br?cGMP同样能够产生强烈的舒血管作用,且与E2的舒血管作用相似,进一步阐明了E2的舒血管作用有赖NO?cGMP通路的参与.   NO?cGMP通路激活GC,升高细胞内重要的第二信使cGMP,通过cGMP的介导,激活PKG,PKG通过以下机制产生舒血管作用: ①    抑制L?型钙通道,减少钙内流,增加钙泵对钙的摄取,从而降低细胞内游离的钙离子浓度;② 直接作用于收缩蛋白而使血管舒张;③ 在某些血管组织中,PKG还可特异性抑制磷酸二酯酶活性,阻止cAMP降解而加强cAMP介导的舒张作用;④ 活化K+通道,加速细胞复极化,抑制钙内流[7]. 我们的结果表明L?NAME和MB可以完全阻断E2的舒血管作用,提示E2激活NO?cGMP通路产生舒血管效应[8]. E2的快速舒血管作用为内皮依赖性,说明血管内皮细胞在E2的刺激下分泌NO增加,引起血管舒张. 这与Geary等[9]在小鼠大脑动脉的研究是一致的. Binko的研究发现[10]: 去内皮后的大鼠胸主动脉急性暴露10-6 mol/L的E2 10  min后并没有明显减弱新福林引起的收缩作用,而与E2孵育24 h后,可以明显减弱新福林收缩血管的程度,并活化平滑肌细胞NOS,刺激NO的表达和分泌.
  
  总之,E2对TA具有依赖内皮的舒张作用. 它作用于血管内皮细胞促进NO的释放,激活NO?cGMP通路,舒张血管. 这是以非基因组的方式快速舒张TA.

【】
  [1] Stampfer MJ, Colditz GA, Willett WC, et al. Postmenopausal estrogen therapy and cardiovascular disease. Ten?year follow?up from the nurses? health study[J]. N Engl J Med, 1991,325:756-762.

  [2] Cruz MN, Douglas G, Gustafsson JA, et al. Dilatory responses to estrogenic compounds in small femoral arteries of male and female estrogen receptor?beta knockout mice[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2006,290(2):H823-829.

  [3] Leung HS, Seto SW, Kwan YW, et al. Endothelium?independent relaxation to raloxifene in porcine coronary artery[J]. Eur J Pharmacol, 2006, 20, [Epub ahead of print.

  [4] Nevala R, Paukku K, Korpela R, et al. Calcium?sensitive potassium channel inhibitors antagonize genistein? and daidzein?induced arterial relaxation in vitro[J]. Life Sci, 2001, 69(12):1407-1417.

  [5] Dubey RK, Oparil S, Imthurn B, et al. Sex hormones and hypertension[J]. Cardiovasc Res, 2002,53(3):688-708.

  [6] Mendelsohn ME, Karas RH. The protective effects of estrogen on the cardiovascular system[J]. N Engl J Med, 1999,340(23):1801-1811.

  [7] Lincoln TM, Dey N, Sellak H. cGMP?dependant protein kinase signaling mechanisms in smooth muscle: from the regulation of tone to gene expression[J]. J Appl Physiol, 2001,91:1421-1430.

  [8] Li HF, Zhang P, Tian ZF, et al. Differential mechanisms involved in effects of genistein and 17?beta?estradiol on porcine coronary arteries[J]. Pharmazie, 2006,61(5):461-465.

  [9] Geary GG, Krause DN, Duckles SP. Estrogen reduces mouse cerebral artery tone through endothelial NOS? and cyclooxygenase?dependent mechanisms[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2000,279: H511-H519.

  [10] Binko J, Majewski H.17 beta?Estradiol reduces vasoconstriction in endothelium?denuded rat aortas through inducible NOS[J]. Am J Physiol, 1998,274(3 Pt 2):H853-859.