载雄激素受体三螺旋形成寡核苷酸PEG-PLGA纳米粒子的制备与应用

来源:岁月联盟 作者:袁超 时间:2010-07-12

【摘要】  以生物可降解材料聚乙二醇-聚乳酸聚乙醇酸共聚物(PEG-PLGA)制备载雄激素受体三螺旋形成寡核苷酸的纳米粒子(TFO-NPs),并初步探讨其对前列腺癌LNCaP细胞的生长抑制作用。 【方法】 采用改良自乳化溶剂挥发法(modified-SESD)制备TFO-NPs,对其形态、包封率、载药量及体外释放特点进行鉴定。倒置荧光显微镜观察LNCaP细胞对TFO-NPs的摄取情况,四唑盐(MTT)法测定体外细胞毒作用。 【结果】 制备的TFO-NPs呈球形、大小均匀,平均粒径128 nm,平均包封率和载药量分别为72.28%和1.02%,在体外具有缓释作用。LNCaP细胞对TFO-NPs的摄取率显著高于裸TFO。TFO-NPs对LNCaP细胞的抑制作用明显强于裸TFO(P < 0.05),抑制率分别为61.2% ± 6.5%和20.7% ± 3.1%。 【结论】 本法制备的TFO-NPs理化性质优良,在体外能够有效抑制LNCaP细胞的增殖。

【关键词】  聚乙二醇-聚乳酸聚乙醇酸共聚 改良自乳化溶剂挥发法 纳米粒 三螺旋形成寡聚核苷酸 前列腺癌

  Abstract: 【Objective】 To prepare androgen receptor gene TFO loaded nanoparticles (TFO-NPs) with biodegradable material poly (ethylene glycol)-poly (lactide-co-glycolide) (PEG-PLGA) and to investigate their inhibitory effect on LNCaP cells in vitro. 【Methods】 TFO-NPs were prepared by modified spontaneous emulsion solvent diffusion method (modified-SESD). Then their morphology, encapsulation rate, drug loading efficiency and drug released characteristics were identified. The uptake of TFO-NPs by LNCaP cells was observed by an inverted florescent microscope, and the cytotoxicity to LNCaP cells was determined by MTT assay. 【Results】 The TFO-NPs were spherical, uniform, with mean diameter of 128 nm. Their encapsulation rate and drug loading efficiency of TFO-NPs were 72.28% and 1.02%, respectively. The release test in vitro showed significant sustained release. The cellular uptake rate of TFO-NPs was markedly higher than that of naked TFO. The inhibitory effect on LNCaP cells of TFO-NPs was significantly obvious than that of naked TFO(P < 0.05), and their inhibitory rates were 61.2% ± 6.5% and 20.7% ± 3.1%, respectively. 【Conclusions】 The physicochemical properties of TFO-NPs prepared by modified-SESD method are excellent. TFO-NPs can inhibit LNCaP cells proliferation efficiently in vitro.
Key words: PEG-PLGA; modified-SESD; nanoparticles; triplex-forming oligonucleotide; prostatic cancer

  纳米药物载体的构建是抗肿瘤研究中的一个热点[1,2]。作为基因药物载体,纳米粒子具有生物安全性好、稳定性强、转染效率高、作用时间长等优点。聚乳酸-聚乙醇酸[poly(lactide-co-glycolide), PLGA]是一种生物相容性好、可生物降解的聚酯类高分子,它在体内降解成乳酸和羟基乙酸,最终代谢成水和二氧化碳,无毒性、无免疫原性,已被美国FDA批准应用于临床研究 [3]。雄激素受体三螺旋形成寡核苷酸(triplex-forming oligonucleotide, TFO)是由本课题组自主设计的一段寡核苷酸序列,能有效抑制雄激素受体表达和前列腺癌细胞增殖[4]。为进一步增强TFO的抗前列腺癌效果,我们以聚乙二醇[poly(ethylene glycol) , PEG]修饰的PLGA为材料,制备了载TFO的PEG-PLGA纳米粒子(后文简称TFO-NPs),并对其体外细胞毒作用作初步探讨,报告如下。

  1  材料和方法

  1.1  主要材料

  聚乙二醇(甲氧基封端)修饰的聚乳酸-聚乙醇酸(PEG-PLGA,山东罡正生物科技有限公司)、聚乙烯醇(PVA,美国Sigma公司)、丙酮(广州化学试剂厂)、乙醇(广州化学试剂厂)、二氯甲烷(广州化学试剂厂)、四甲基偶氮唑蓝(MTT,美国Sigma公司)。

  1.2  主要设备

  FN2004N分析天平(上海天平厂)、JB-2磁力搅拌机(上海雷磁新仪器厂)、TGL-20M冷冻离心机(湖南凯达仪器公司)、Virtis 2K冷冻干燥机(美国Virtis公司)、SCIENTZ-ⅡD超声仪(宁波新芝生物科技股份公司)、ZFQ-85A真空减压旋转蒸发仪(上海医械专机厂)、Zetasizer Nano ZS90激光粒度测定仪(英国 Malvern公司)、Beckmen coulter DU640分光光度计(美国 Beckman公司)、FEI Quanta 600扫描电子显微镜(荷兰 FEI公司)、Vivaspin 20超滤离心管(德国 Sartoruis公司)、倒置荧光显微镜TE2000-U(日本Nikon公司)、全自动酶标仪ELX800(美国 BIO-TEK公司)。

  1.3  雄激素受体TFO

  TFO序列[3]为5′-GGAGAGGAAGGAGGA-3′,由上海生工生物工程有限公司合成,相对分子质量4 763,采用全硫代磷酸修饰。摄取实验中TFO的5′端采用羧基荧光素(5-FAM)进行荧光标记。

  1.4  TFO-NPs的制备

  采用modified-SESD法[5]制备TFO-NPs。具体步骤如下:TFO 20 OD溶于200 μL TE(pH 8.0)缓冲液中;30 mg PEG-PLGA溶于1∶1(v/v)丙酮/乙醇混合液中,形成有机相;将TFO溶液加入有机相中,冰浴下超声乳化:50 w, 3 × 10 s;磁力搅拌下(300 r/min,r=10 cm)将乳化液缓慢滴入30 mL 30 g/L PVA溶于中,形成纳米粒子悬液;将纳米粒子悬液移入真空旋转蒸发仪,40 ℃减压蒸发1 h,挥发除去残余的丙酮和乙醇。而后将NPs悬浮分散液先于2 000 r/min低速离心除去团聚颗粒,再以12 000 r/min的速度离心40 min,沉淀用蒸馏水洗涤。离心和洗涤重复3次以去除PVA及残余的丙酮和乙醇。所得纳米粒子10 mL双蒸水重悬后冻干保存。

  1.5  TFO-NPs的表征

  取2 mL纳米粒子悬液样品,25 ℃条件下动态激光光散射法(DLS)测定纳米粒子大小、分布及zeta电位。取1 ~ 2滴纳米粒胶体分散体系,将其滴入覆有支持膜的铜网上,干燥后,粒子溅射镀金膜,在扫描电子显微镜(SEM)下观察纳米粒子的形态、表面形貌。

  1.6  TFO-NPs的包载率和载药量测定

  将TFO-NPs制备过程中离心弃去的上清液收集起来,采用紫外分光光度法测定TFO的含量(260 nm,1 OD ODN≈33 μg)。按如下公式包封率和载药量。包封率=(投药量-游离药物量) /投药量 × 100%;载药量=(投药量-游离药物量)/纳米粒的质量 × 100%。

  1.7  TFO-NPs体外释放实验

  精确称量TFO-NPs 40 mg,加入10 mL TE缓冲液中,超声分散形成均匀纳米粒子悬液。将纳米粒子悬液放入超滤管中,在恒温振荡培养箱中保持37 ℃、 100 r/min振荡,每天定时取样(共20 d),并补充等量新鲜缓冲液于超滤管中,保持体积不变。更换出的滤液,用紫外分光光度计测定260 nm处吸光度,计算释放量,绘制累积释放曲线。

  1.8  LNCaP细胞摄取实验

  LNCaP细胞常规于含100 mL/L胎牛血清的F12培养液中,在37 ℃、体积分数为5% CO2、饱和湿度的细胞培养箱中传代培养。取对数生长期细胞,用含2.5 ml/L胰酶的消化液消化,以每孔1 × 104个细胞种于6孔培养板,48 h细胞贴壁后吸除培养液,按分组情况分别加入无血清F12稀释的TFO-NPs悬液(含TFO 6 mg/L)和TFO(6 mg/L),每组设3个平行孔,2 h后吸除药物,PBS洗涤3次,置于倒置荧光显微镜下观察。

  1.9  MTT法检测细胞增殖活性

  取对数生长期细胞,消化后以每孔5 × 103个细胞种于96孔培养板,细胞贴壁后按分组情况分别加入F12培养液(空白对照组)、TFO(6 mg/L)、TFO-NPs(含TFO 6 mg/L),每组设6个平行孔。2 h后吸除药物,更换新鲜培养液继续培养72 h后,每孔加入MTT 20 μL(5 g/L),继续培养4 h,弃去液体,每孔加入150 μL二甲基亚砜,振荡混匀10 min,置于酶标仪上读取490 nm处吸光度(A)值,抑制率:细胞抑制率= (1-实验组A值)/对照组A值 × 100%。

  1.10  统计学方法

  实验数据以均数±标准差表示,样本均数的比较采用SPSS 11.0统计软件进行 t 检验。

  2 结 果

  2.1  TFO-NPs的表征与性质鉴定

  DLS测定表明,TFO-NPs粒径分布呈较窄的单峰,且呈正态分布,多分散指数为(polydispersity indices,PDI) 0.2,平均粒径为128 nm,zeta电位为-3.74 mV(图1)。SEM照片显示TFO-NPs的形态为规则球形,表面光滑,大小均匀,纳米粒之间无黏连(图2)。TFO-NPs的包封率为72.28% ± 3.04%,载药量为1.02% ± 0.06% (n = 3)。体外释放实验显示,TFO-NPs的释放过程分为两个阶段,24 h内药物快速释放,释放量在30%左右,24 h后药物进入持续性释放过程,20 d后累计释放量在90%以上(图3)。

  2.2  LNCaP细胞对TFO-NPs的摄取

  加药后2 h倒置荧光显微镜下观察LNCaP细胞对TFO的摄取情况(激发波长:488 nm;发射波长:525 nm),可见LNCaP细胞摄取TFO-NPs 的比例明显高于裸TFO,摄取TFO-NPs 的LNCaP细胞内荧光强度较高(图4)。

  2.3  TFO-NPs对LNCaP细胞的体外抑制作用

  MTT法结果显示,TFO-NPs对LNCaP细胞的生长抑制率为61.2% ± 6.5%,裸TFO对LNCaP细胞的生长抑制率为20.7% ± 3.1%,两者之间比较t = 3.205,P = 0.01,差异有统计学意义。

  3  讨  论

  近年来PLGA纳米粒子药物载送系统已成为聚合物纳米粒子研究中的热点。由于PLGA纳米粒子具有疏水性的表面,进入血液循环后易被血清调理素吸附,由网状内皮系统(reticuloendothelial system, RES)清除,除靶向RES的药物外,很难有效载送药物到达其它靶组织。报道[6]采用PEG修饰PLGA纳米粒子,能够使PLGA纳米粒子获得亲水性保护,可以有效避免RES的清除,延长循环时间,所以我们采用PEG-PLGA材料制备载TFO的纳米粒子。目前,制备PLGA纳米粒子最常用复乳溶剂挥发法,此法常以二氯甲烷为有机相,残留的二氯甲烷对机体的毒性较大,而本文采用modified-SESD法制备PEG-PLGA纳米粒子,以丙酮/乙醇做有机相,可以大大减低纳米粒子的毒性。

  粒径大小、载药量和缓释能力是衡量纳米粒子优劣的重要指标。本法制备的TFO-NPs呈均匀球形,平均粒径128 nm,平均载药量为1.02%,体外缓释作用可达20 d以上,与同类研究结果水平相当[7],表明制备方法是成功的。文献报道PLGA纳米粒的载药量均较低[8],如何提高聚酯类纳米粒子的载药能力是研究者共同面临的问题。我们正在探索通过适当提高聚合物的分子量、在外水相中用载药加以饱和等措施进一步提高PEG-PLGA纳米粒子对TFO的载药能力而又不显著增加纳米粒子粒径的方法。

  由于TFO是线性亲水性的核酸分子,而细胞膜是脂溶性脂质双分子膜,膜上又无核酸通道,因此裸TFO较难透过细胞膜被LNCaP细胞摄取。经PEG-PLGA纳米粒子包载后,LNCaP细胞对TFO摄取率显著增加,这可能是由于通过胞吞作用聚合物纳米粒子可以有效地进入细胞[9,10],另外,由于纳米粒子具有特别小的尺寸、特别高的表面能,当纳米粒子具有适当的特性时可以直接穿透细胞膜进入细胞[11]。正是由于PEG-PLGA纳米粒子能高效地介导TFO进入LNCaP细胞,因此TFO-NPs对LNCaP细胞的生长抑制作用明显强于裸TFO。本文结果为以雄激素受体为靶点的前列腺癌分子靶向奠定了基础。

【文献】
    周嘉嘉, 陈汝福, 卢红伟, 等. 两亲多糖纳米胶束作为药物缓释载体的制备及释药研究 [J]. 中山大学学报:医学版, 2006,27(6):667-671.

  何祥梁,叶海宁,何东华,等. 包裹E1A基因的纳主粒子制备及转染人肺腺癌细胞A549实验研究[J]. 热带医学杂志,2007,7(6):519-521,508.

  平其能,主编. 药剂学 [M]. 北京:医药科技出版社,1999:793-794.

  张 勇, 陈维真, 谢 瑶, 等. 雄激素受体三螺旋形成寡核苷酸抗前列腺癌细胞增殖的研究 [J]. 中华核医学杂志, 2005,25(2):97-99.

  Murakami H, Kobayashi M, Takeuchi H. Preparation of poly (DL-lactide-co-glycolide) nanoparticles by modified spontaneous emulsification solvent diffusion method [J]. Int J Pharm, 1999,187(2):143-152.

  Yang AS, Yang L, Liu W, et al. Tumor necrosis factor alpha blocking peptide loaded PEG-PLGA nanoparticles: Preparation and in vivo evaluation [J]. Int J Pharm, 2007,331(1):123-132.

  Avgoustakis K, Beletsi A, Panagi Z, et al. PLGA-mPEG nanoparticles of cisplatin: in vitro nanoparticle degradation, in vitro drug release and in vivo drug residence in blood properties [J]. J Cont Res, 2002, 79(1-3):123-135.

  Cohen-Sacks H, Najajreh Y, Tchaikovski V, et al. Novel PDGFβR antisense encapsulated in polymeric nanoparticles for the treatment of restenosis [J]. Gene Therapy, 2002,9(23):1607-1616.

  Panyam J, Zhou WZ, Prabha S, et al. Rapid endo-lysosomal escape of poly (D, L-lactide-co-glycolide) nanoparticles: implications for drug and gene delivery [J]. FASEB J, 2002,16(10):1217-1226.

  陈 波, 熊利华, 华 平,等. 纳米血管生成素-2小干扰RNA质粒制备及功能研究 [J]. 中山大学学报:医学科学版, 2005,26(2):146-150.