缺血预处理对大鼠缺血再灌注小肠能量代谢、Bcl

来源:岁月联盟 作者:刘新,刘欣 时间:2010-07-12

【关键词】  缺血预处理

    Effect of ischemic preconditioning on energy metabolism and  expressions of Bcl2 and Bax in ischemia/reperfusion of rat small intestine

  【Abstract】 AIM: To study the effect of ischemic preconditioning on cell apoptosis following acute intestinal ischemia/reperfusion in rats and explore their relationship. METHODS:Thirtysix SD rats were randomized into 3 groups each consisting of 12 rats: shamoperated control group(C group), ischemic reperfusion group(I/R group, the anterior mesenteric artery occlusion for 60 min followed by reperfusion for 120 min ), ischemic preconditioning group (IPCI/R, clamping the anterior mesenteric artery for 10 min followed by unclamping it for 10 min, all for 4 times before I/R). Immunohistochemistry was used to detect the expressions of Bcl2 and Bax. Twentyfour fields of vision were selected in each group to determine A value. TUNEL method was applied to detect apoptotic intestinal cells, and to calculate the apoptotic index.  RESULTS:The contents of ATP in C and IPCI/R groups were significantly higher than that in I/R group (P<0.05);the A value of Bcl2 in I/R group was remarkably lower than that in C group (P<0.05), and the A value of Bcl2 in IPCI/R group was obviously higher than those in C and I/R groups (P<0.01); the A value of Bax in I/R group was significantly higher than those in C and IPCI/R groups(P<0.01), and the A value of Bax in IPCI/R group was remarkably higher than that in C group (P<0.05). Compared with that in C group, the apoptotic indexes in I/R and IPCI/R group were significantly higher (P<0.01 and P<0.05); Compared with that in I/R group, the apoptotic index in IPCI/R group was significantly lower (P<0.01). CONCLUSION:Ischemic preconditioning can curb ATP degeneration,enhance the expression of Bcl2, decrease the expression of Bax, inhibit the apoptosis following small intestinal ischemic reperfusion.
  
  【Keywords】 small intestine; preconditioning; ischemic reperfusion; apoptosis; gene

  【摘要】 目的:探讨缺血预处理对小肠细胞能量代谢和凋亡基因bcl2,bax表达的影响及它们与肠细胞凋亡的内在联系. 方法:健康SD大鼠36只,雌雄不限,随机分为3组,空白对照组(C组)、缺血预处理组(IPCI/R组)和缺血再灌注组(I/R组),每组12只. 按Murry法制备缺血预处理模型,I/R组用血管钳夹闭肠系膜前动脉1 h,再灌注2 h, IPI/R组用血管钳夹闭肠系膜前动脉10 min松开10 min,反复4次,余同I/R组. 高效液相色谱法测定ATP,ADP含量;免疫组化检测Bcl2及Bax蛋白的表达,每组选24个视野分别测量A值. TUNEL法检测凋亡的小肠细胞并凋亡指数. 结果:C和IPCI/R组ATP含量高于I/R组(P<0.05); IPCI/R组Bcl2 A值高于C组和I/R组(P<0.01),I/R组Bcl2 A值低于C组(P<0.05);I/R组Bax A值明显高于C组和IPCI/R组(P<0.01),且IPCI/R组高于C组(P<0.05);与C组比较,I/R组和IPCI/R组凋亡指数较高(P<0.01, P<0.05);与I/R组相比,IPCI/R组凋亡指数较低(P<0.01). 结论:缺血预处理能在一定程度上延缓ATP降解并调控Bcl2及Bax蛋白的表达、抑制缺血再灌注介导的小肠细胞凋亡.

  【关键词】 小肠;缺血预处理;缺血再灌注;细胞凋亡;基因

  0引言

  肠缺血再灌注损伤广泛见于临床,是导致多脏器功能障碍的重要原因. 研究表明,凋亡是其损伤的主要方式,与细胞的能量代谢和凋亡基因的蛋白表达有关. 缺血预处理(ischemic preconditioning, IP)对缺血再灌注小肠有较好的保护作用[1-2],但它对细胞凋亡的影响研究较少. 我们通过大鼠小肠缺血预处理模型,从细胞凋亡的角度探讨缺血预处理对小肠细胞凋亡基因bcl2和bax表达的影响.

  1材料和方法

  1.1材料Bcl2 mAb,Bax mAb,SP试剂盒、原位细胞凋亡检测试剂盒(均为Santa Cruz公司产品,USA);ATP,ADP标准品(Sigma公司,USA).

  1.2方法

  1.2.1动物分组与模型制备健康SD大鼠36只(由武汉大学实验动物中心提供),体质量225~275 g,雌雄不限. 随机分为空白对照组(C组)、缺血再灌注组(I/R组)和缺血预处理组(IPCI/R组). 术前12 h禁食不禁水,20%氨基甲酸乙酯1 g/kg腹腔注射麻醉,腹中线切开,找到肠系膜前动脉,C组不夹闭肠系膜前动脉;I/R组用血管钳夹闭肠系膜前动脉1 h,再灌注2 h,IPCI/R组依据Wu等[3]方法,用血管夹夹闭肠系膜前动脉10 min,松开10 min,反复4次,余同I/R组. 三组均于手术开始时分别经股静脉输注生理盐水20 μL/g,手术过程中均面罩给氧(FiO2=33%),术毕放血处死,距回盲部20 cm取回肠组织2 cm,用现配多聚甲醛液固定24 h,做Bcl2和Bax蛋白的表达及细胞凋亡检测.

  1.2.2观察指标及方法①小肠组织ATP,ADP含量:各组距回盲部20 cm取回肠组织0.5 g置液氮保存,用高效液相色谱法测定ATP,ADP含量. ②免疫组化检测bcl2及bax基因的表达(SP法):石蜡切片脱腊至水;30 mL/L H2O2孵育10 min以消除内源性过氧化物酶的活性,蒸馏水冲洗,PBS浸洗5 min;加正常山羊血清封闭液以消除背景非特异性染色;分别滴加兔抗Bax,Bcl2,cmyc蛋白mAb/pAb(每张切片仅加一种抗体),37℃孵育1 h;滴加生物素标记羊抗兔IgG,37℃孵育15 min;滴加辣根酶标记链霉卵白素,37℃孵育15 min;上述三步均PBS洗5 min×3次;DAB显色,自来水充分冲洗,苏木素复染,封片. 阴性对照以PBS代替一抗孵育,其他步骤相同;阳性对照用已知的阳性标本. 在显微镜400倍下用HPIAS1000医学彩色图像分析系统测量A值,每组选24个视野(每组12只大鼠各取1张切片,每张切片取2个视野)分别测量,计算A值的均数作为此组的代表值;③TUNEL法检测凋亡细胞:二甲苯脱蜡,梯度乙醇入水;切片浸泡于柠檬酸盐缓冲液(pH=6),置医用微波炉92~98℃中处理15 min,取出后室温冷却;1∶5小牛血清20 μL封闭非特异反应,37℃孵育15 min;3 mL/L H2O2孵育10 min以消除内源性过氧化物酶的活性;POD 20 μL 37℃孵育30 min;上述5步均以10 mmol/L磷酸缓冲液(pH=7.4)洗5 min×3次;DAB显色,自来水充分冲洗,苏木素复染,封片. 每张切片于40倍目镜下随机取5个视野,每组共60个视野,计算凋亡指数(apoptotic index, AI), AI=凋亡细胞数目/总细胞数目×100%.

  统计学处理: 计量资料以x±s表示,应用SPSS 10. 0软件进行单因素方差分析, P<0.05为差异有统计学意义.

  2结果

  2.1ATP,ADP含量C组和IPCI/R组ATP含量高于I/R组(P<0.05),ADP含量各组无显著性差异(表1).

  2.2Bcl2和Bax蛋白表达I/R组Bcl2 A值低于C组(P<0.05),IPCI/R组Bcl2 A值高于C组和I/R组(P<0.01); Bax A值,I/R组明显高于C组和IPCI/R组(P<0.01),且IPCI/R组高于C组(P<0.05,表1).

  2.3TUNEL法检测小肠细胞凋亡与C组比较,I/R组和IPCI/R组AI较高(P<0.01,P<0.05),与I/R组相比, IPCI/R组AI较低(P<0.01,表1).

  表1三组ATP,ADP含量(μmol/g湿质量),Bcl2,Bax蛋白表达及AI的比较(略)

  aP<0.05, bP<0.01 vs C组;  cP<0.05, dP<0.01 vs I/R组. C:对照组;I/R:缺血再灌注组;IPCI/R:缺血预处理组;ATP:三磷酸腺苷;ADP:二磷酸腺苷;AI:凋亡指数.

  2.4三组TUNEL凋亡细胞、Bax及Bcl2阳性细胞表达情况见图1~3.

  A: 有较少的Bcl2阳性细胞表达; B: 有较少的Bax阳性细胞表达; C: 有较少的凋亡细胞阳性表达.

  图1对照组Bcl2, Bax及TUNEL凋亡细胞阳性表达IH ×200(略)

  3讨论

  肠I/R可因急性失血、休克、严重多发性创伤等因素引起,它可引起肠道和导致远端器官的损伤. IP可通过增加谷胱甘肽含量和保护SOD活性[4]、减少细菌异位和降低iNOS活性[2]、蛋白激酶C和线粒体K(ATP)通道开放[5]以及血红素加氧酶1释放[6]等多种途径保护缺血再灌注小肠,其保护作用的机制尚未完全阐明,目前认为细胞的能量代谢和凋亡也可能占有重要地位. 我们采用血管夹夹闭肠系膜前动脉A: 有较少的Bcl2阳性细胞表达; B: 有较多的Bax阳性细胞表达; C: 有较多的凋亡细胞阳性表达.

  图2缺血再灌注组Bcl2, Bax及TUNEL凋亡细胞阳性表达IH ×200(略)

  A: 有较多的Bcl2阳性细胞表达,表现为间质细胞呈淡黄色连续的细颗粒状; B: 有较少的Bax阳性细胞表达; C: 有较少的凋亡细胞阳性表达,表现为小肠细胞胞核有不均匀的黄褐色颗粒,胞浆复染为淡蓝色.

  图3缺血预处理组Bcl2, Bax及TUNEL细胞阳性表达IH ×200(略)

  复制肠I/R和IP模型,结果显示,肠I/R后,小肠组织的ATP含量和Bcl2蛋白表达均降低, Bax蛋白表达及AI显著增加;而IP后肠I/R,ATP含量和Bcl2蛋白表达增加,Bax蛋白表达及AI降低,提示凋亡及其相关因素参与了缺血再灌注损伤,IP对缺血再灌注损伤有保护作用.

  线粒体是细胞重要的细胞器之一,它除了产生ATP供能外,在细胞氧化还原状态和渗透压调节、钙稳态和pH维持以及细胞信号转导中起重要作用. 细胞无论坏死或凋亡线粒体都要经历诱导、效应、降解阶段. ATP对线粒体通透性转换后细胞走向坏死还是凋亡有重要意义, ATP耗竭走向坏死,否则走向凋亡. 研究表明[7],IP后,组织可产生“缺血、再灌注耐受”,需能和代谢降低,氧自由基、活化中性粒细胞释放和细胞凋亡减少. 我们研究发现,肠缺血再灌注后,AI显著增加可能与ATP含量降低有关;而IP后,ATP含量变化不大,可能与能量需要和代谢降低有关.

  Bcl2表达水平与细胞寿命呈正相关,因此Bcl2又称为“生存基因”. Bax属Bcl2基因家族,在高浓度时可启动细胞死亡,低浓度时可使细胞器释放出某些分子,引起半胱氨酸蛋白酶的活化. Bcl2基因家族通常以二聚体的形式发挥作用,Bax/Bcl2异二聚体可促进细胞凋亡,而Bcl2/Bcl2同二聚体可结合于线粒体内膜稳定其通透性,以防止细胞凋亡的末端效应子半胱氨酸蛋白酶(Caspases)的激活. 我们实验发现:I/R组Bax蛋白表达明显高于C组和IPCI/R组,与肠黏膜损伤和AI变化一致,说明缺血再灌注肠细胞凋亡是Bax介导的,且IP能降低缺血再灌注肠细胞Bax蛋白表达. 而IPCI/R组Bcl2蛋白表达明显高于I/R组和C组,说明I/R在一定程度上可增加Bcl2蛋白表达,与Cinel等[1]报道一致. 总之,尽管IP可通过多种途径保护缺血再灌注小肠,但部分可能与减少ATP降解、增加Bcl2蛋白表达和降低Bax蛋白表达有关,其具体机制有待进一步研究.

  【】

  [1] Cinel I,Avlan D,Cinel L,et al.Ischemia preconditioning reduce intestinal epithelial apoptosis in rats[J].Shock,2003,19(6):588-592.

  [2] Aksoyek S,Cinel I,Avlan D,et al.Intestinal ischemic preconditioning protects the intestine and reduce bacterial translocation[J].Shock,2002,18(5):476-480.

  [3] Wu B, Ootani A, Iwakiri R, et al. Ischemic preconditioning attenuates ischemiareperfusion induced mucosal apoptosis by inhibiting the mitochondriadependent pathway in rat small intestine[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2004,286(4):G580-587.

  [4] Ferencz A,Szanto Z,Borsiczky B,et al.Effect of ischemic preconditioning on the oxidative stress in small bowel autotransplanation[J].Surgery,2002,132(5):877-884.

  [5] Wang YP,Maeta H,Mizoguchi K,et al.Intestinal ischemia preconditions myocardium: Role of protein kinase C and mitochondrial K(ATP) channel[J].Cardiovasc Res,2002,55(3):576-582.

  [6] Tamion F,Richard V,Lacoume Y,et al.Intestinal preconditioning prevents systemic inflammatory response in hemorrhagic shock.Role of HO1[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2002,283(2):408-414.

  [7] Pasupathy S, HomerVanniasinkam S. Ischaemic preconditioning protects against ischaemia/ reperfusion injury: Emerging concepts[J]. Eur J Vasc Endovasc Surg,2005,29(2):106-115.