维生素E琥珀酸酯下调mdr1/P?gp表达逆转K562/ADM耐药细胞的凋亡抑制

来源:岁月联盟 作者: 时间:2010-07-12

            作者:郭璐,魏虎来, 张亚莉, 刘建民

【摘要】    目的 研究维生素E琥珀酸酯(Vitamin E succinate, VES)诱导多药耐药K562/ADM细胞凋亡的分子机制。方法 采用四氮唑蓝比色法(MTT)检测K562/ADM增殖活性;细胞形态学和Annexin V/PI双标记法检测细胞凋亡;RT?PCR检测mdr1基因和Caspase?3基因mRNA的表达;流式细胞法(FCM)测定P?gp蛋白表达水平和Caspase?3活性。结果 VES显著抑制K562/ADM细胞的增殖;经VES处理后细胞形态上出现典型的凋亡改变;Annexin Ⅴ/PI双染检测凋亡细胞明显增加;mdr1 mRNA表达和P?糖蛋白(P?glycoprotein,P?gp)合成明显降低,Caspase?3 mRNA表达和Caspase?3活性显著增强;VES增加K562/ADM细胞对ADM的敏感性。结论 VES诱导mdr1/P?gp高表达的K562/ADM耐药细胞凋亡,其主要机制为下调mdr1/P?gp表达而逆转P?gp介导的细胞凋亡抑制和耐药性。

【关键词】  维生素E琥珀酸酯 多药耐药 凋亡抑制 P?糖蛋白;Caspase?3;白血病

    Key words:Vitamin E succinate;  Multidrug resistance; Apoptosis resistance; P?glycoprotein; Caspase?3; Leukemia

  维生素E琥珀酸酯(Vitamin E succinate, VES)是α?生育酚的6位羟基与琥珀酸酯化而形成的衍生物。研究证实,VES可选择性地杀伤人白血病、乳腺癌、前列腺癌等多种肿瘤细胞,而对正常细胞无抑制效应[1?3]。有关VES对耐药白血病(肿瘤)细胞作用的研究少见,我们曾研究证实VES可抑制白血病K562/ADM耐药细胞增殖并诱导其凋亡[4]。本文以白血病多药耐药K562/ADM细胞为模型,观察VES诱导其凋亡过程中耐药基因mdr1及其编码产物P?糖蛋白(P?glycoprotein,P?gp)表达的变化,探讨VES诱导耐药细胞凋亡的分子机制。

    1  材料和方法

    1.1  试剂

    维生素E琥珀酸酯(Vitamin E succinate, VES)为美国Sigma公司产品,用无水乙醇配制成50 mmol/L的储存液。RPMI1640为美国Gibco BRL公司产品;新生牛血清购自杭州四季清生物工程材料研究所。阿霉素(ADM)为日本明治制药公司产品。MTT、SDS、琼脂糖、RNase、溴化丙锭(EB)、碘化丙啶(PI)和二乙基焦碳酸(DEPC)均由美国Sigma公司出品。100bp DNA Ladder Marker由美国Promega公司出品。抗P?gp单抗(MRK16)为Kamiya Biomedical公司产品,PE标记的羊抗鼠IgG2a为Caltag公司产品。TRIZOL试剂由美国Invitrogen公司生产。AMV一步法RT?PCR试剂盒购自上海生物工程有限公司。mdrl、Caspase?3和β?actin基因引物由上海生物工程有限公司合成。FITC标记的DEVD?FMK和Annexin V试剂盒为Biovision公司产品。

    1.2  细胞培养

    K562/ADM多药耐药白血病细胞由兰州大学医学实验中心保存,细胞在含有15%小牛血清、100u/ml青霉素、100μg/ml链霉素和2mmol/L L?谷氨酰胺的RPMI1640完全培养基中,置37℃、5%CO2孵箱中培养,定期添加ADM(~5.0mg/L)以刺激mdr1/P?gp高表达。细胞在无ADM的条件下培养1周后用于实验。

    1.3  细胞增殖活性

    K562/ADM细胞以2×108/L接种于96孔培养板(Costar)中,分别加入10~60μmol/L VES,对照组加入终浓度<0.2%(V/V)的无水乙醇。培养24~96h后MTT比色法[5]检测,并细胞增殖抑制率和半数抑制浓度(IC50)。

    1.4  细胞形态学观察

    VES处理后的K562/ADM细胞,细胞离心涂片机(StatSpin Cytofuge 2型)离心涂片,Wrigh?Giemsa染色,光镜观察。同时收集细胞,3%戊二醛固定,经脱水,环氧树脂包埋,超薄切片,铀铅双重染色,透射电镜(JEM?1230)观察细胞超微结构。

    1.5  Annexin Ⅴ/PI双标记检测凋亡细胞

    按试剂盒说明操作。收集K562/ADM细胞,PBS洗涤,重悬于Binding Buffer中,加入PI和FITC 标记的Annexin Ⅴ, 室温避光染色5min,流式细胞仪(Beckman?Coulter Epics XL)检测[6]。

    1.6  RT?PCR检测mdr1和Caspase?3基因mRNA表达

    TRIZOL法提取细胞总RNA,以β?actin为内参照,AMV一步法RT?PCR检测 mdr1和Caspase?3 基因mRNA表达情况。引物分别为:mdr1:上游5’?CCCATCATTGCAATAGCAGG?3’,下游5’?GTTCAAACTTCTGCTCCTGA?3’,扩增产物167bp;Caspase?3:上游5’?CAAACTTTTTCAGAGGGGATCG?3’,下游5’?GCATACTGTTTCAGCATGGCAC?3’,扩增产物272 bp;β?actin:上游5’?GTGGGGCGCCCCAGGCACCA?3’,下游5’?CTCCTTAATGTCACGCACGATTTC?3’,扩增产物548bp。PCR扩增产物凝胶电泳,凝胶图像分析系统(Syngene ChemiGenius 2)分析。

    1.7  P?gp表达测定

    收集K562/ADM细胞,PBS洗涤,分别加入鼠抗人P?gp单抗MRK?16(一抗)和PE标记的羊抗鼠IgG2a(二抗),FCM检测P?gp的表达阳性率和平均荧光强度(MFI)[7]。

    1.8  Caspase?3活性测定

    根据试剂盒说明操作。收集细胞,PBS洗涤,加入FITC?DEVD?FMK,37℃孵育1h,洗涤,FCM检测活化Caspase?3活性[8]。

    1.9  药物敏感性

    K562/ADM细胞经20μmol/L和40μmol/L VES与不同浓度的ADM联合处理48h,细胞终止培养后MTT比色法[5]检测并计算细胞增殖抑制率。

    1.10  统计学分析

    采用SPSS10.0统计软件进行相关性分析和直线回归。

    2  结果

    2.1  VES诱导K562/ADM细胞凋亡

    VES呈时间和浓度依赖性地抑制K562/ADM细胞增殖(P<0.01), 24h、48h、72h和96h的IC50分别为77.9μmol/L、66.3μmol/L、49.7μmol/L和39.9μmol/L。经20μmol/L和40μmol/L VES处理后,K562/ADM细胞出现胞膜起泡,染色质凝集、核碎裂及凋亡小体形成等典型的凋亡形态学改变,见图1。Annexin V/PI染色显示凋亡细胞明显增高,20μmol/L和40μmol/L VES处理24h细胞凋亡率分别为29.0%和54.7%,48h为60.8%和74.8%。证实VES对K562/ADM细胞有明显的增殖抑制效应,并促使细胞凋亡。

    2.2  VES下调K562/ADM细胞mdr1 mRNA表达,抑制P?gp合成K562/ADM细胞mdr1/P?gp呈高表达。20μmol/L和40μmol/L VES后,mdr1 mRNA表达下降,凝胶图像分析,48h的表达抑制率分别为8.78%和46.54%,见图2; P?gp合成显著降低,72h时P?gp表达阳性率由98.2%降低至87.8%~75.1%,表达强度(MFI)降低约50%,见图3。

    2.3  VES上调K562/ADM细胞Caspase?3基因mRNA的表达,增强Caspase?3活性 K562/ADM细胞Caspase?3基因mRNA呈微弱表达。经20μmol/L和40μmol/L VES处理,Caspase?3 mRNA表达明显增高,凝胶图像分析显示分别增高24.3%和84.3%,见图2;Caspase?3活性显著增强,活化Caspase?3由9.3%增高至21.3%和39.8%,见图3。

    2.4  VES增加K562/ADM细胞对ADM的敏感性

    20μmol/L和40μmol/L VES 与不同浓度ADM共同作用48h,对K562/ADM细胞产生联合增殖抑制效应(P<0.05),见图4。VES与ADM的联合效应可能是VES抑制K562/ADM细胞P?gp表达,提高耐药细胞对抗癌药物ADM的敏感性,逆转细胞抗药性和凋亡抑制。

    白血病多药耐药(Multi?drug resistance,MDR)的发生均伴随着细胞凋亡抑制(Apoptosis resistance)现象,绝大多数常规抗癌药物几乎不能诱导耐药细胞凋亡。K562/ADM细胞是经阿霉素(ADM)长期诱导而获得的mdr1/P?gp超表达的白血病耐药细胞,对ADM、柔红霉素(DNR)、米托蒽醌(MIT)、高三尖杉酯碱(HHT)和足叶乙甙(Vp16)等抗癌药物表现出复杂的交叉耐药[9]。近年研究发现,P?gp除作为一种能量依赖“药泵”主动性地将药物从细胞内排出而导致耐药外,还通过抑制Caspase?3和Caspase?8等的激活而介导耐药细胞的凋亡抑制[7,10,11],因此,P?gp在白血病耐药细胞凋亡抑制的发生中起着关键作用。

    维生素E琥珀酸酯(VES)作为一种潜在的肿瘤细胞生长抑制剂,其抗肿瘤作用机制包括抑制肿瘤细胞DNA合成,诱导凋亡;阻断细胞周期使肿瘤细胞停滞于G1期;诱导细胞分化;促进转化生长因子β(transforming growth factor β, TGF?β)分泌与活化及TGF?βⅡ型受体的表达;促进肿瘤细胞表面Fas(CD95/APO?1)的表达等[1?3,12]。我们以前的研究证实VES可抑制耐药白血病细胞增殖,并诱导其凋亡[4]。白血病细胞发生MDR后,其生物学特性发生了很大的变化,因此,VES诱导耐药细胞凋亡的机制也可能异于药物敏感细胞。本研究发现,VES诱导K562/ADM耐药细胞凋亡过程中,mdr1 mRNA表达水平和P?gp合成量显著降低,而Caspase?3 mRNA表达水平和Caspase?3活性则明显增高,呈剂量和时间依赖性;同时发现VES可显著提高K562/ADM细胞对ADM的敏感性。鉴于P?gp在白血病耐药细胞耐药性和凋亡抵抗中的关键作用,我们的研究结果提示VES诱导白血病耐药细胞凋亡的机制与其抑制mdr1/p?gp表达,解除P?gp对Caspase?3等的抑制效应,并增加抗癌药物的敏感性,从而逆转因P?gp高表达所介导的凋亡抑制和细胞耐药有关。

    多药耐药白血病(肿瘤)细胞的凋亡抵抗现象和干预对策是目前肿瘤耐药研究的热点之一,鉴于维生素E及其衍生物的特性,深入研究其在干预白血病(肿瘤)耐药细胞凋亡抑制的作用及其可能的分子机制,将为临床耐药白血病(肿瘤)开发更新、更有效的药物提供依据。

【】
    [1] Wang XF, Witting PK, Salvatore BA, et al. Vitamin E analogs trigger apoptosis in HER2/erbB2?overexpressing breast cancer cells by signaling via the mitochondrial pathway[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2005, 326(2): 282?289.

[2] Swettenham E, Witting PK, Salvatore BA, et al. Alpha?tocopheryl succinate selectively induces apoptosis in neuroblastoma cells: potential therapy of malignancies of the nervous system[J]. J Neurochem, 2005, 94(5): 1448?1456.

[3] Neuzil J, Weber T, Gellert N, et al. Selective cancer cell killing by alpha?tocopheryl succinate[J]. Br J Cancer, 2001, 84(1): 87?89.

[4] 刘建民,魏虎来,张哲文. 维生素E琥珀酸酯诱导耐药白血病K562/ADM细胞凋亡[J]. 肿瘤防治杂志,2005,12(5):325?328.

[5] Wei HL, Su HX, Yao XJ. Biological feature of human T?activated killer cells[J]. Chin J Cancer Res,1999, 11(2): 111?114.

[6] Wilkins RC, Kutzner, BC Truong M, et al. Analysis of radiation?induced apoptosis in human lymphocytes: flow cytometry using Annexin V and propidium iodide versus the neutral comet assay[J]. Cytometry, 2002, 48(1): 14?19.

[7] Smyth MJ, Krasovskis E, Sutton VR, et al. The drug efflux protein, P?glycoprotein, additionally protects drug?resistant tumor cells from multiple forms of caspase?dependent apoptosis [J]. PNAS, 1998, 95(12): 7024?7029.

[8] Zhang Y, Wang H, Li J, et al. Peroxynitrite?induced neuronal apoptosis is mediated by intracellular zinc release and 12?lipoxygenase activation[J]. J Neurosci, 2004,24(47): 10616?10627.

[9] Tsuruo T, Iida?Saito H, Kawabata H, et al. Characteristics of resistance to adriamycin in human myelogenous leukemia K562 resistant to adriamycin and in isolated clones[J]. Jpn J Cancer Res, 1986, 77: 682?692.

[10]Johnstone RW, Cretney E, Smyth MJ, et al. P?glycoprotein protects leukemia cells against caspase?dependent, but not caspase?independent, cell death[J]. Blood, 1999, 93: 1075?1085.

[11]Karwatsky J, Lincoln MC, Georges E. A mechanism for P?glycoprotein?mediated apoptosis as by Verapamil hypersensitivity[J]. Biochemistry, 2003, 42(42): 12163?12173.

[12]Weber T, Dalen H, Andera L, et al. Mitochondria play a central role in apoptosis induced by alpha?tocopheryl succinate, an agent with antineoplastic activity: comparison with receptor?mediated pro?apoptotic signaling[J]. Biochemistry, 2003, 42(14): 4277?4291.