豚鼠慢性充血性心力衰竭动物模型的研究

来源:岁月联盟 作者:熊晨 贡树基 武彦昭 时间:2010-07-12

【摘要】  目的 探讨豚鼠慢性充血性心力衰竭(CHF)动物模型的制作方法。 方法 采用降主动脉缩窄法建立豚鼠CHF模型(模型组20只,对照组10只)。8周后观察以下指标:临床表现、血流动力学、左心室重与体重比值、肺重与体重比值及室壁厚度。 结果 降主动脉缩窄8周后,14只豚鼠出现呼吸困难(BPC组),但BPC组豚鼠的左室收缩压及舒张末压均显著增高,左室压升高和降低最大速率均显著降低;左心室重与体重比值、肺重与体重比值及室壁厚度明显增高,呈现明显的心衰指征。而缩窄8周后未见呼吸困难的豚鼠(BWPC组)仅左心室重与体重比值增加,尚处于代偿期。 结论 降主动脉缩窄8周后可造成豚鼠CHF。

【关键词】  豚鼠 主动脉缩窄 慢性充血性心力衰竭

    【Abstract】 Objective To develop CHF animal model in guinea-pig.Methods Guinea-pig CHF model was made by constricting descent of aorta.Such indexes were observed as clinical behavior,hemodynamics,the mass ratio of left ventricle to body,the mass ratio of lung to body,and the width of left ventricular hypertrophy after8weeks.Results 14models animals that were constricted for8weeks developed dyspnea(BPC group).All these animals showed the symptoms of CHF,which include left ventricular systolic and end diastolic pressure increment,the mass ratio of ventricle and lung to body,by decreasing and the width of left ventricular pressure maximal rising and declining velocity.But the banded animals without dyspnea(BWPC group)only showed increasing in the mass ratio of ventricle to body and were still in the course of compensation.Conclu-sion It can develop Guinea-pig CHF after constricting descent of aorta for8weeks.

    【Key words】 Guinea-pig;Constricting descent of aorta;Chronic congestive heart failure

    慢性充血性心力衰竭(congestive heart failure,CHF)是指各种原因所致心输出量不能满足机体代谢需要,以循环障碍为主的综合征[1] ,是心脏瓣膜病等许多心血管疾病的最终结果,是一种进行性心脏功能损害。泵功能障碍的主要原因是心室肌细胞收缩能力的进行性减退。在某些细胞电生特性方面,豚鼠比大鼠更接近人类,如其在心室肌细胞兴奋-收缩耦联过程中调控[Ca2+ ]i的不同途径所占比例 [2,3] ;尤其豚鼠对强心苷(CS)类等强心药物敏感等特点。因此,在研究心肌细胞兴奋-收缩耦联过程、压力超负荷致CHF的发病机制及重构机制以及寻找CHF的药物及作用机理等过程时,有必要以豚鼠为对象制作CHF模型。根据豚鼠的生物学特征,采用腹主动脉缩窄方式弊端较多且需时太长(20个月),故本实验,采用降主动脉缩窄法建立豚鼠CHF模型,并通过检测指标进行判断。

  1 材料与方法

    1.1 实验动物  雄性豚鼠30只,体重250~300g,其中模型组20只,对照组10只,各组同室饲养。

    1.2 方法  降主动脉缩窄法致豚鼠慢性充血性心力衰竭模型的制备[4] 。

    1.2.1 术前准备  皮下注射阿托品(0.10mg.kg),以减少呼吸道分泌物;30min后腹腔内注射氯胺酮(30mg.kg)麻醉,并在手术部位用10g.L利多卡因做局部麻醉。因存在个体差异,麻醉药酌情应用,以痛觉存在的浅麻醉为佳,利于尽早清醒,确保呼吸道通畅。颈部及心前区备皮,2%碘酊和75%乙醇依次消毒。

    1.2.2 建立人工气道  将豚鼠仰卧、四肢展开固定于操作台上,以颈部触及气管最明显处露出分离气管长约0.5~0.8cm,沿气管环状软骨间隙剪一个小口,压迫止血约3min后,给予气管插管,正压通气,潮气量4~5ml,呼吸频率45次.min。