脐带血干细胞治疗慢性肾功能不全19例近期疗效分析

来源:岁月联盟 作者: 时间:2010-07-12

                                 作者:陶其强 唐明淇 许冬联 穆志静 刘 影 张丽欣

【摘要】  从2009年1月至2009年11月,我科共对19例慢性肾功能不全的患者进行干细胞移植,其中尚未开始血液透洗者7例,已经透洗者12例,并进行了1-2个月的随访观察。其中,尿素氮、肌苷下降者3例,占15.79%,尿量增加者2例,占10.52%,夜尿习惯改变者1例,占5.26%,肾血管明显增加者1例,占5.26%;恶心、呕吐症状改善者2例,占10.52%,总有效率47.37%。表明:干细胞治疗慢性肾功能不全有一定的近期疗效,远期疗效还需要进一步观察。
【关键词】  干细胞 移植 慢性肾功能不全
【Abstract】 From January 2009 to November 2009, a total of 19 cases of patients with chronic renal failure undergoing stem cell transplantation. Among them, the urea nitrogen and creatinine decreased in 3 cases, accounting for 15.79%;urine output increased in 2 cases, accounting for 10.52%;nocturnal habits changes in 1 case, accounting for 5.26%; the renal blood vessels increased in 1 case, accounting for 5.26% ;the symptoms of nausea and vomiting improved in 2 cases, accounting for 10.52%. the total effective rate was 47.37%. The results showed that stem cell therapy for chronic renal failure have a certain short-term effects, The long-term effects need further observation.
【Keywerds】  stem cell   transplantation   chronic renal failure
        1 对象与方法
        1.1  研究对象  2009年1月-2009年11月在我院细胞治疗中心住院并确诊为慢性肾功能不全的患者19例,男12例,女7例,年龄20-63岁,平均(47.6±4.9)岁。入选患者需满足以下条件:(1)尿素氮、肌苷均高于正常且呈进行性升高;(2)经过其他方法长期治疗不能恢复正常;(3)需要透洗的病人继续给予透洗治疗。
        1.2  研究方法
        1.2.1  患者准备  于患者入院后进行全面检查,包括血尿便常规、肝肾功能、出凝血时间、乙肝五项、丙肝抗体、滋病抗体、梅毒抗体以及心电图、肝胆脾B超、胸部X光片等,全面评价患者的身体状况。对于适合干细胞移植的患者,签定干细胞治疗知情同意书和介入治疗知情同意书。介入手术前做碘过敏试验和手术区备皮。
        1.2.2  干细胞的制备  无菌纱布蘸75%酒精,擦拭所有操作过程中所需物品及操作台。将含有枸橼酸钠抗凝剂的脐血或骨髓200ml的血袋,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭进行消毒,将其倒入试剂A中瓶中(注:若试剂A中试剂超过200ml需弃掉,血与试剂比例为1:1)。将试剂B全部倒入A瓶中,盖紧瓶盖,充分摇匀(5min)注:若不能充分摇匀,则分层速度非常缓慢。将试剂A瓶置于超净台,松动瓶盖后静置20-30min,待分层。12支离心管拆封,备用。取试剂C,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭其外壁消毒,开盖,用新移液管移取25ml试剂C置于50ml新离心管中,一共移取3次,得到3支有试剂C液的离心管,备用。取步骤1静置20-30min后的试剂A瓶中的上层液,用移液管移取分别置于离心管中每只45ml,盖紧盖置于离心机中设置速度为2500转时间为5分钟温度为5℃,从离心机中取出离心管,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭其外壁消毒,开盖,弃上清液,取新移液管,移取0.9%氯化钠分别加入到离心管中至10ml处,摇匀得细胞混合液备用。取步骤2下装有试剂C液的离心管,倾斜并缓慢加入步骤3下的细胞混合液,保持细胞混合液悬浮于试剂C液表面,加至45ml(注:2支步骤3下细胞混合液加入到1支含 C液的离心管中,共计45ml),轻放至试管架,即得到3支具有分层液的离心管,置于离心机中,设置速度为1800转时间为30分钟温度为5℃。从离心机中轻取出离心管,尽量保持离心管中液面平稳,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭其外壁消毒,开盖,用一次性胶头滴管吸取离心管中间的絮状液体(一般取至液面到18-20ml处),收集置三支新离心管中,用移液管加入0.9%氯化钠至45ml处,充分与细胞液摇匀,取一支离心管与其他三管配平,置入离心机中,设置速度为2000转时间为5分钟温度为5℃(注:第一次清洗),取出具有细胞液的离心管,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭其外壁消毒,开盖,弃上清液后,用注射器先加入少量0.9%氯化钠,摇匀后吸取至一支试管内,加入0.9%氯化钠至45ml处,再摇匀,与配平试管一同置入离心机内设置速度为1800转时间为5分钟温度为5℃(注:第二次清洗),取出具有细胞液的离心管,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭其外壁消毒,开盖,弃上清液,用注射器先加入少量0.9%氯化钠,摇匀后加入0.9%氯化钠至45ml处,再摇匀与配平试管一同置入离心机内设置速度为1600转时间为5分钟温度为5℃(注:第三次清洗),取出具有细胞液的离心管,用蘸75%酒精的无菌纱布擦拭其外壁消毒,开盖,弃上清液后加入0.9%氯化钠至所需要稀释刻度处,摇匀,用微量定量移液器取10ul用于细胞计数,其余细胞液密封,置于冰桶内待用。

        1.2.3  干细胞计数  计数板上有四个象限,每个象限内有16个小格,将四个象限内共64个小格内的细胞数总和除以四所得的数乘以所稀释的毫升数再乘以10的4次方,即得细胞数。
        1.2.4  干细胞回输  严禁X线照射;细胞产品请尽快回输,以免影响细胞活性;细胞回输时务必使用输血器,按照输血常规进行操作;在回输前、中、后检测患者体温、脉搏、呼吸、血压;回输细胞产品时,先用0.9%的氯化钠20-30ml冲管,开始输入细胞时保持20-30滴/分钟,半小时后无不良反应可增加到30-50滴/分钟,细胞回输过程中每15分钟轻轻晃动细胞袋一次,细胞输入完毕后用0.9%的氯化钠20ml冲入细胞保存袋中轻轻晃动,输入完毕后再用0.9%的氯化钠将输血器中细胞冲净,以保证细胞回输数量。
        1.2.5  干细胞动脉介入移植 患者仰卧位,选右股动脉为穿刺点,常规消毒,铺无菌巾,利多卡因局部麻醉,穿刺成功后通过导丝引导将导管分别送入双侧肾动脉,推注造影剂证实导管在肾动脉后将干细胞缓慢注入注入完毕后拔管,局部加压包扎,下肢制动24小时,拆除绷带。
        2  结果
        2.1 尿素氮、肌苷下降者3例,占15.79%,尿量增加者2例,占10.52%,夜尿习惯改变者1例,占5.26%,肾血管明显增加者1例,占5.26%;恶心、呕吐症状改善者2例,占10.52%,总有效率47.37%。其中,尿素氮肌苷下降的3例和肾血管明显增加的1例患者均属于没有进行血液透洗的病人。表明:干细胞慢性肾功能不全有一定的近期疗效,特别是对尚没有开始透洗的患者有效率达57.14%,远期疗效还需要进一步观察。
        3 讨论
        慢性肾功能不全是各种肾脏疾病的终末阶段,常规疗法无明显效果,肾脏移植是治疗该病的有效手段,技术也已经成熟,但由于活体肾脏的来源限制,只有极少数患者能够进行肾移植手术,大多数病人需要血液透洗维持生命。
        干细胞是指人体内尚未分化的细胞,具有自我复制和多向分的化潜,在不同的条件诱导下,可以分化为不同的组织细胞[1-2]。研究证实成体干细胞具有可塑性 。可塑性是指一种组织的干细胞可以分化形成另外一种组织的细胞,并且能跨谱系和胚层分化[3-4]。目前应用骨髓干细胞和外周血干细胞对非肿瘤性肾脏疾病的预防及治疗已取得了一定的效果,并且有人尝试用成体干细胞治疗急性或慢性肾功能衰竭已取得初步的成果[5]。虽然成体干细胞治疗肾脏疾病已取得一定的效果,但其增殖、分化能力和可塑性以及对成体干细胞免疫学的研究还比较少,是否存在免疫排斥反应尚没有肯定的结论[6]。我们的研究显示:干细胞治疗慢性肾功能不全有一定的近期疗效,特别是对尚没有开始透洗的部分患者出现客观指标的改善,所有患者均未出现免疫排斥反应,远期疗效还需要大样本长时间的进一步观察。

参 考 文 献
[1] 李桂英,董博.造血干细胞移植术的研究进展[J].医药卫生,2008,24(1):82-83.
[2] 达万明,裴雪涛.外周血干细胞移植[M].北京人民出版社,2007:7-8. 
[3] Turhan AG.Plasticity of adult stem cells.Transfus Clin Biol,2003,l0(3):103-108.
[4] Herzog EL,Chal L,Krause DS ,et a1.Plasticity of marrow-deried stem cells.Blood,2003,102(10):3483-3493.
[5] Bredie TC,Humes HD.Stem cell approaches for the treatment of renalfailure.Pharmacol Re,2005,57(3):299-313.
[6] Fang TC,Alison MR, Wring NA,et a1.Adult stem cell Plasticity:will engineered tissue be rejected.International Journal of Experimental Pathology,2004,85(3):115-124.