Bax蛋白在丁酸钠诱导食管癌细胞凋亡中的表达
来源:岁月联盟
时间:2010-07-14
【关键词】 丁酸钠 食管癌细胞 凋亡
the Expression of the Bax Proteinum of Sodium Butyrate on Apoptosis in Human Esophageal Carcinoma Cells Eca?109 in Vitro
Abstract: Objective:To investigate the effects of sodium butyrate (NaB) on apoptosis in human esophageal carcinoma cells Eca?109 in vitro. Methods: Eca?109 cells was treated with NaB in concertrations of 1 mmol/L, 2.5 mmol/L, 5 mmol/L.Immunohistochemical staining was used to detect the expressions of bax in cells. Results :Some morphologic features of apoptosis were examined by microscopy. The expression rates of the bax in the test group were lower than the control group(P <0.05). Conclusions: NaB could promote the apoptosis in human esophageal carcinoma cells Eca?109. the mechanism of the process may be related to inhibiting the expression of the bax proteinum.
Key word:sodium butyrate; esophageal carcinoma cells; apoptosis.
丁酸钠(Sodium butyrate, NaB)是一种短链脂肪酸,可由植物纤维在肠分解而成,它是一种动物代谢所需的天然成分。其生理浓度可以引起多种生物效应,被认为是一种基因表达的调控剂,可以促细胞生长、分化和凋亡[1],也可用于癌症[2]。有报道正常结肠上皮需要一定浓度丁酸钠方可维持其增殖和分化,撤去丁酸钠引起细胞凋亡[1]。许多研究也表明NaB可以诱导包括乳腺癌、前列腺癌、胶质瘤、白血病等多种体外培养的细胞凋亡[2,6]。但NaB用于治疗食管癌的实验研究国内外报道甚少,为此我们将NaB与人食管癌Eca?109细胞共培养,观察NaB诱导食管癌细胞凋亡的作用,探讨其作用机制。
1 材料和方法
1.1 细胞培养
人食管癌细胞Eca?109购自院上海细胞生物学研究所,接种于含10%小牛血清的RPMI 1640培养液中,在37℃、5%CO2培养箱中培养。
1.2 丁酸钠处理
丁酸钠(Sigma公司),用PBS配成500 mmol/L贮存液,-20℃保存。丁酸钠药物作用分3组,浓度分别为1 mmol/L、2.5 mmol/L、5 mmol/L,并设不加药的阴性对照组,分别于作用24 h后收集细胞。
1.3 光镜观察
取对数生长期细胞,用0.25%胰酶消化计数,用RPMI 1640培养液调整细胞浓度为1×105/ml,接种于24孔培养板,2 ml/孔,孵育24 h后观察细胞已贴壁,吸弃原培养液。实验组每孔分别加入终浓度为1.0 mmol/L、2.5 mmol/L、5.0 mmol/L NaB的培养液2 ml,对照组加不含NaB的培养液2 ml,分别培养24 h、48 h、72 h后,在倒置显微镜下观察细胞生长形态,用WinFast PVR软件记录结果并拍照。
1.4 免疫组化检测Eca109细胞bax蛋白表达
收集细胞,调整浓度为3×105/ml,接种于已置盖玻片的96孔板内,待细胞贴壁后,弃原液,分别加入终浓度为1 mmol/L、2.5 mmol/L、5 mmol/L的NaB培养液,设不加药的为对照组。每组每个浓度设4个复孔,继续培养24 h。取出有贴壁细胞的盖玻片(即细胞爬片),PBS冲洗晾干,95%乙醇固定20 min,进行免疫组化(SP)法染色,操作步骤按SP试剂盒说明书进行,同时设阳性、阴性及空白对照。胞质内出现棕色颗粒为阳性细胞,光镜下(10×20)每个浓度每张爬片随机计数1 000个细胞,每组4张爬片的阳性细胞平均数。鼠抗人bax单克隆抗体及免疫组织化学SP试剂盒均购自福州迈新生物技术开发有限公司。
1.5 统计学处理
采用单因素方差分析和Poission 分布法检验,以α=0.05为检验水准,为差异有显著性。
2 结果
2.1 倒置显微镜下观察结果
不同浓度NaB作用Eca?109细胞不同时间段后,倒置显微镜下可见,对照组细胞呈多边形上皮样,贴壁生长,似铺路石样,细胞分裂增殖旺盛;而实验组,在1 mmol/L浓度NaB作用下,细胞变小、变为长梭形,并伸出较长突起,趋向成纤维细胞形态;5 mmol/L浓度NaB作用下,随着作用时间延长,细胞变小、变圆,部分细胞从培养瓶壁上脱落下来,漂浮于培养瓶中,细胞生长明显受到抑制。
2.2 免疫组化检测凋亡相关基因bax蛋白的表达
对照组bax呈强阳性表达,阳性率为63%,随着NaB作用浓度的增大,bax阳性表达越来越弱,其阳性率也逐渐降低(表1),实验组分别与对照组比较有显著性差异(P<0.05),实验组之间比较差异也有显著性(P<0.05)。表1 Eca?109细胞 bax蛋白表达阳性率(略)注:*与各组比较P<0.05。
3 讨论
近年来许多实验研究发现,某些人体内存在的物质可以作为肿瘤生长抑制剂,丁酸钠就是这种抑制剂[1],它是由结肠共生菌发酵食物纤维产生的一种四碳短链脂肪酸,能在生理浓度下抑制结肠癌、乳腺癌、前列腺癌、胶质瘤、白血病等多种体外培养的细胞生长、促进其分化,使肿瘤细胞出现类似正常细胞的表型,并可诱导细胞凋亡[2,6],对于食管癌这方面的研究仅见少数报道。本实验将丁酸钠设置不同的作用浓度、不同的作用时间处理食管癌Eca?109细胞,在倒置显微镜下观察到丁酸钠处理后的Eca?109细胞形态学发生了改变,细胞生长明显受到抑制,表明丁酸钠可以诱导体外培养的食管癌Eca?109细胞凋亡。有关丁酸钠诱导肿瘤细胞凋亡的作用机制尚未完全明确。目前比较明确的是丁酸钠是一种重要的组蛋白去乙酰化抑制剂,通过抑制组蛋白去乙酰化酶(histone deacetylase inhibitor, HDAC)活性,增强组蛋白乙酰转移酶(histone acetyl transferase, HAT)的活性,导致组蛋白高乙酰化,使组蛋白与相邻DNA的接触受抑制,导致染色体结构凝聚从而抑制基因转录,有利于转录因子激活特异性的基因。
细胞凋亡是机体重要的生理过程,对维持内环境的稳定至关重要,抑制细胞凋亡在肿瘤发生、中的作用日益为学者所重视。本实验应用免疫组化检测凋亡相关基因bax表达率下降,与对照组差异均有显著性(P<0.05),说明丁酸钠能诱导体外培养的人食管癌Eca?109细胞凋亡,其机制与下调凋亡抑制基因bax蛋白的表达有关。这为丁酸钠用于临床食管癌提供了理论和实验依据。然而丁酸钠促进细胞凋亡的分子机制可能非常复杂,其更多的分子机制尚有待于进一步研究。
【】
[1]Chen Js, Faller DV, Spanjaard RA. Short?chain fatty acid inhibitors of histone deacetylases: Promising anticancer therapeutics[J]. Curr Cancer Drug Targets, 2003,3(3):219?236.
[2]Blottiere HM, Buecher B, Galmiche JP, et al. Molecular analysis of the effect of short?chain fatty acids on intestinal cell proliferation[J]. Proc Nutr Soc, 2003, 62(1):101?106.
[3]Chopin V, Toillon RA, Jouy N, et al. P21(WAF1/CIP1) is dispensable for G1 arrest, but indispensable for apoptosis induced by sodium butyrate in MCF?7 breast cancer cells[J]. Oncogene, 2004, 23(1): 21?29.
[4]Kuefer R, Hofer MD, Altug V, et al. Sodium butyrate and tributyrin induce in vivo growth inhibition and apoptosis in human prostate cancer[J]. Br J Cancer, 2004, 90(2): 535?541.
[5]Tsubaki J, Hwa V, Twig SM, et al. Differential activation of the IGF binding protein?3 promoter by butyrate in prostate cancer cells[J]. Endocrinology, 2002, 43(5): 1778?1788.
[6]kamitani H, Taniura S, Watanabe K, et al. Histone acetylation may suppress human glioma cell proliferation when p21 WAF/Cip1 and gelsolin are induced[J]. Neuro?oncol 2002, 4(2): 95?101.