激素抵抗型哮喘发病机制研究进展

来源:岁月联盟 作者:佚名 时间:2010-07-12

  [摘要] 激素抵抗型哮喘是对较大剂量的糖皮质激素反应很差的哮喘。综述了近5 a来国内外对激素抵抗型哮喘分类,重点从细胞功能、细胞因子、转录调节、热休克蛋白基因调节、自身调节的角度探讨了继发性激素抵抗型哮喘的发病机制。


  
  随着对哮喘本质认识的深入,治疗的重点转变为预防和控制气道炎症和气道高反应(AHR)[1]。糖皮质激素(简称激素)是强有力的抗炎药物[2]。如何充分发挥激素的治疗效应,减少激素的副作用,是临床医生十分重视的问题。激素对哮喘的治疗作用存在很大差异。临床上有一部分哮喘病人对激素治疗产生抵抗,使其治疗比较困难或导致严重的副作用。


  激素抵抗型(steriod-resistant, SR)哮喘,是指那些用大剂量激素(一般为口服泼尼松40 mg·d-1)治疗1 wk(一般为7~14 d)后,其1 s用力呼气容积( FEV1)的改善率(实测值/预计值)不超过15 %的哮喘。如FEV1改善率超过25 %则为激素敏感型( steriod-sensitive, SS)哮喘。其余为激素依赖性哮喘。与SS哮喘相比较,SR哮喘具有年龄较大、哮喘史长、气道反应性明显增高及夜间发作等特点。研究表明,激素抵抗只限于激素抗炎和免疫调节方面,而与其药物动力学无关,故可能与糖皮质激素受体(GR)异常有关。现一般从发病机制上将SR哮喘分为原发性和继发性2种。


  原发性SR哮喘 原发性SR哮喘是由原发性GR亲和力异常造成的,为激素受体病,因GR缺陷常造成胎儿流产、死亡,故较少见,常有家族史。Diana等[3]对1例6 a男病儿的单核淋巴细胞激素受体脱氧核糖核酸(DNA)序列研究表明,其染色体2317位点第729个氨基酸上A突变为D,氨基酸代码ATT变为DTT。在分别转染野生型人GR与人GR-I1e729的COS-1细胞株上,其GR解离平衡常数(Kd)各是(0.799±0.068) nmol·L-1和(1.54± 0.06) nmol·L-1(P<0.01)。说明GR激素结合区的突变可能是原发性SR哮喘的发病原因之一。


  继发性SR哮喘 继发性SR哮喘是由于继发性GR缺陷,使GR与激素或(和)特异性DNA结合部位的亲和力下降等异常所致。其病人易出现柯兴氏综合征的迹象和症状,其清晨血浆皮质醇浓度下降。其发病机制可能为:


  1 细胞功能异常 通过在SR哮喘发病机制中可能起作用的细胞如单核细胞、中性粒细胞、淋巴细胞等研究表明,T淋巴细胞起关键作用。Sher等[4]研究发现,哮喘病人不论是SR哮喘还是SS哮喘,都有T淋巴细胞GR缺陷,只是SR哮喘下降的程度比SS哮喘明显。大多数SR哮喘的GR缺陷局限于T淋巴细胞,仅极少数不只限于T淋巴细胞。Joseph等[5]通过几种激素不同浓度时对SR哮喘和SS哮喘中T淋巴细胞的作用发现,SR哮喘中半抑制浓度(IC50)大约是SS哮喘的100倍,且在氢化可的松和布地奈德的治疗中有统计学意义。生理浓度的氢化可的松不能抑制SR哮喘中植物凝集素(PHA)诱导的T淋巴细胞分化,但对SS哮喘的T淋巴细胞有显著抑制作用,说明内源性氢化可的松可能对抑制SR哮喘病人气道炎症无效。也说明,激素抵抗是T淋巴细胞在基础水平上仍处于活化状态,使得激素的作用不敏感。孙永昌等[6]发现泼尼松治疗前SR哮喘和SS哮喘病人血清中可溶性白细胞介素-2受体(sIL-2R)的水平均显著高于正常对照组(P<0.001),说明哮喘病人外周血T淋巴细胞处于活化状态。泼尼松治疗后SS哮喘中sIL-2R水平显著下降,但SR哮喘的sIL-2R无明显变化。泼尼松对SR哮喘中T淋巴细胞增殖的抑制作用显著低于SS哮喘。但氧化苦参碱(oxymatrine)和胸腺免疫抑制物对T淋巴细胞增殖的抑制作用在2组之间无显著性差异。说明T淋巴细胞对激素的反应性降低及由此引起的T淋巴细胞持续活化是SR哮喘的免疫特点。


  2 细胞因子调节异常 Jeffey等[7]通过在体外培养发现,与正常组相比,SR哮喘病人的外周血单个核细胞(PBMC)单独培养24 h后,其PBMC中GR亲和力明显下降,且培养48 h后可恢复正常。但加入白细胞介素- 2(IL- 2)和白细胞介素-4(IL-&nbs p;4)培养后其GR亲和力的下降却无明显改善,且此IL-2和 IL-4的作用可被γ-干扰素(IFN-γ)阻止。IL-2和IL-4协同作用使T淋巴细胞的GR亲和力和T淋巴细胞对激素的反应性下降。这说明在哮喘持续炎症过程中,某些细胞因子可能使GR对激素的反应性受损。激素不能抑制他们诱导的T淋巴细胞分化和细胞因子的分泌。Leung等[8]认为SR哮喘可能与辅助性T淋巴细胞亚群(Thl/Th2)细胞因子基因表达的改变有关。一般说来,变应性哮喘气道中Th2细胞占优势,其表达的IL-4、白细胞介素-5(IL-5)等导致IgE合成增加和以嗜酸性粒细胞为主的气道炎症,故细胞因子分泌和进行性炎症可导致SR哮喘。SR哮喘病人与SS哮喘相比,治疗前其支气管肺泡灌洗液(BALF)中细胞表达IL-2,IL-4明显得多,但INF-γ和IL-5信使核糖核酸(mRNA)表达无明显差异。治疗后2组IL-2表达均无明显改变,但SS哮喘BALF中mRNA阳性细胞表达IL-4,IL-5的数量明显下降,IFN-γ转录增强,而SR哮喘中IL-4,IL-5无明显变化,IFN-γ却意外地下降。说明SR哮喘中IL-4,IL-5水平较高,而 IFN-γ水平较低。故SR哮喘与气道中编码Thl/Th2细胞因子的基因表达调节障碍有关。Spahn等[9]用3H-地塞米松放射配基分析法和Scatchard分析证明,与SS哮喘相比,SR哮喘病人气道中白细胞介素-13(IL-13)mRNA表达的水平明显增高。IL-13(其性质和IL-4相似)对非T淋巴细胞群,尤其是单核细胞系中GR亲和力有显著降低作用,使这些细胞中氢化可的松对抑制脂多糖(LPS)诱导白细胞介素-6(IL-6)产生的作用显著降低。孙永昌等[10]发现SR哮喘和SS哮喘在一般临床特征及基础肺功能方面无显著差异。SR型哮喘PBMC的GR水平显著降低(P<0.05),且地塞米松对PBMC产生IL-4的抑制作用下降(P<0.001)。均说明SR哮喘在细胞因子方面存在异常。


  3 转录调节异常 通过药物动力学和放射配基分析方法等研究表明SR哮喘病人GR在转录水平上存在异常。Adcock等[11,12]对PBMC中核内转导的GR与激素反应元件(GRE)的亲和力研究发现,在SS哮喘和正常非哮喘病人中,地塞米松可诱导PBMC的GR-GRE亲和力明显快速而稳定上升2倍,而在SR哮喘中却显著下降。通过Scatchard分析表明,GR-GRE亲和力没有改变,但能与DNA结合的GR数量却有所下降。认为SR哮喘可能同与GRE结合的GR数量减少有关。通过对SR哮喘和SS哮喘病人PBMC中转录因子活化蛋白-1(AP-1)、胞核因子-κB(NF-κB))、环磷腺苷反应元件结合蛋白(CREB)与DNA结合位点的亲和力及其与GR结合的能力分析,发现尽管SR哮喘在炎症中活化的其他转录因子未受影响,但GR与AP-1之间相互作用显著下降。AP-1和NF-κB与GR的双信号识别是激素对呼吸道上皮细胞抗炎作用的机制[13]。SR哮喘病人细胞核中AP-1与DNA的亲和力基础水平上升。其表达AP-1组分C-fos, C-jun的mRNA数目及序列均无异常。此结果表明,GR与GRE及AP-1结合的改变或者阻碍GR-DNA结合的AP-1水平上升,是激素在这些细胞中激素抵抗的细胞学基础。


  4 热休克蛋白基因表达异常 国内学者姚彬等[14]采用逆转录-多聚酶链反应(RT-PCR)技术研究PBMC中热休克蛋白(Hsp)70, 90 α,90 β mRNA的表达及采用细胞增殖抑制实验观察地塞米松对T淋巴细胞增殖的抑制程度。结果表明正常人不表达Hsp70 mRNA, SR哮喘组 HsP70, 90 α,90 β mRNA表达明显高于SS哮喘组(P<0.01)。2组Hsp90 α,90 β均显著高于正常组。SS,SR哮喘中Hsp70, 90α,90 β mRNA表达与(地塞米松为10-7 mol·L-1时)T淋巴细胞增殖的抑制程度呈显著负相关(P<0.01)。SR哮喘PBMC中均有Hsp70,90基因的表达,且随着炎症程度加重和持续时间的延长,这种表达能力增强;HSp90基因表达水平越高,地塞米松越难以抑制T淋巴细胞的增殖。


  5 自身调节异常 GR分GR-α和GR-β 2种形式,两者同时存在于效应细胞中,有相互拮抗的作用。GR-α在激素结合 状态通过与特异性GRE的DNA序列的结合而调节激素反应性基因的表达。GR-β不与激素结合,有负性转录作用。Korn等[15]研究认为GR-β以浓度依赖形式抑制激素活性GR-α对激素反应性基因的作用,可能是通过与GR-α竞争GRE或干扰GR-α的信号传递过程而实现的。Leung等[16]通过对PBMC中GR-α和GR-β研究表明,SR哮喘的PBMC中GR-β免疫活性细胞数量显著增高。他们发现SR哮喘中细胞诱导的GR与DNA亲和力异常,可用携带GR-β基因的转录细胞系转染复制,从而导致GR-α与DNA的亲和力下降。故认为细胞诱导的SR哮喘与GR-β数量升高而使α/β的比例失调有关。


  综上所述,SR哮喘可能是由GR结构和功能异常所致。临床上多见于由哮喘疾病本身的或治疗而引起的继发型激素抵抗。主要归纳有2种因素。一种是GR下调,几种致炎因子可激活转录因子AP-1和NF-κB与GR结合形成复合物,或由于GR的自身调节,导致GR有效数目下降。另一种是影响GR的信号传导途径,细胞因子、转录因子表达异常可能影响到GR信号传导途径的某个环节,使GR功能受损。在研究中存在以下问题:(1) SR哮喘的诊断标准,与激素依赖型、SS的划分,不十分统一。(2) 临床病例数太少,不到10例。(3) 吸入激素是否减少气道细胞的GR表达尚无定论。尽管从细胞、分子、转录等水平进行了研究,其发病机制仍很不明确,治疗上仍存在很多问题。对其进行进一步深入研究,将有助于了解激素的作用机制和支气管哮喘的发病机制,有助于正确防治哮喘。

[]


  [1] 石昭泉,罗文侗,叶曜芩.钾通道激活剂及其抗气道高反应性[J].新药与临床,1997,16:101-103.


  [2] 戴家熊.合理应用糖皮质激素防治支气管哮喘[J].新药与临床,1995,14:88-90.


  [3] Malchoff DM, Brufsky A, Reardon G, et al. A mutation of the glucocorticoid receptor in primary cortisol resistance[J]. J Clin Invest, 1993, 91:1921-1925.


  [4] Sher ER, Leung DYM, Surs W, et al. Steroidresistant asthma: celluar mechanisms contributing to inadequate response to glucocorticoid therapy[J]. J Clin Invest, 1994, 93:33-39.


  [5] Spahn JD, Lanclwehr LP, Nimmagadda S, Surs W, Leung DYM, Szefler SJ. Effects of glucocorticoid on lumphocyte activation in patients with steroidsensitive and steroid-resistant asthma[J]. J Allergy Clin Immunol, 1996, 98:1076-1079.


  [6] 孙永昌,罗慰慈,朱元珏.糖皮质激素抵抗型哮喘的免疫学研究[J].中华 内科杂志,1997,20:12-15.


  [7] Kam JC, Szefler SJ, Surs W, Sher ER, Leung DYM. Combination IL-2 and IL-4 reduces glucocortioid receptor-binding affinity and T cell response to glucocorticoids[J]. J Immunol, 1993, 151:3460-3466.


  [8] Leung DYM, Martin RJ, Szefler SJ. et al. Dysregulation of interleukin 4, interleukin 5 and interferon γ gene expression in steroid-resistant asthma[J]. J Exp Med, 1995, 181:33-35.


  [9] Spahn JD, Hamid Q, Surs W, et al. IL-13 mRNA expression in steroid resistant (SR) asthma: diminished glucocrtioid receptor (GCR) binding affinity is induced by IL-13[J]. J Allergy Clin Immunol, 1995, 95:385A.


  [10] 孙永昌,罗慰慈,朱元珏.糖皮质激素抵抗型哮喘的临床、糖皮质激素受体及细胞因子特征[J].中华内科杂志,1998,37:165-167.


  [11] Adcock IM, Lane SJ, Brown CR, Peters MJ, Lee TH, Barnes PJ. Differences in binding of glucocorticoid receptor to DNA in steroid-resistant asthma[J]. J Immunol, 1995, 154:3500-3505.


  [12] Adcock IM, Lane SJ, Brown CR, Lee TH, Barnes PJ. Abnormal glucocrticoid receptor-activator protein-1 interaction in steroid-resistant asthma[J]. J Exp Med, 1995, 182:1956-1958.


  [13] LeVan TD, Behr FD, Adkins KK, Miesfl ed RL, Bloom JW. Glucocorticoid receptor signaling in a bronchial epithelial cell line[J]. Am Physicl Society, 1997, L838-L843.


  [14] 姚 彬,佟万成,朱元珏,等.热休克蛋白70、90基因在激素抵抗型哮喘患者血单个核细胞中的表达[J].中华结核和呼吸杂志,1998,21:287-288.


  [15] Korn OH, Wouters EFM, Wesseling G, Arends JW, Thunissen FBJM. In vitro and in vivo modulation of α-and β-glucocorticoid-receptor mRNA in human bronchial epithelium[J]. Am J Respir Crit Care Med, 1997, 155:1127-1132.


  [16] Leung DYM, Hamid Q, Vottero A, et al. Association of glucocorticoid insensitivity with increased expression of glucocorticoid receptor β[J]. J Exp Med, 1997, 186:1570-1574
  

图片内容