铅暴露大鼠脑不同区域NMDA受体亚基(NR1、NR2A、NR2B)表达的研究

来源:岁月联盟 作者:朱启文,张奇 时间:2010-07-12

【摘要】  观察铅暴露大鼠中不同脑区NMDAR1(NR1)、NMDAR2A(NR2A)和NMDAR2B(NR2B)亚基蛋白和mRNA水平的表达情况。方法:采用Western Blot及RT?PCR技术,测定NR1、NR2A和NR2B亚基蛋白和mRNA在铅暴露大鼠脑中额叶皮质、新小脑、海马及纹状体中的表达情况。结果:铅暴露大鼠中NR1、NR2A和NR2B亚基的蛋白水平和mRNA表达在各个脑区均有不同程度的下调。结论:在铅暴露大鼠的额叶皮质、海马、新小脑和纹状体中,NMDA受体亚基NR1,NR2A和NR2B的表达在mRNA水平就已经发生了改变。

【关键词】  NR1亚基

  AbstractObjective:To investigate the change ofNMDAR1(NR1),NMDAR2A(NR2A)and NMDAR2B(NR2B)subunit expression in the different brain region of plumbum exposure rat.Methods:Western blot technique and RT-PCR technique were used to determine the expression of NR1,NR2A and NR2B subunit protein and mRNA expression in Pb exposure rats brain cortex of frontal lobe, neocerebellum, hippocampus and corpora.Results:The levels of NR1, NR2A and NR2B subunit protein and mRNAs expression in different regions of the brain from Pb exposure rats had different degree down regulation. Conclusion:The expression of NMDA receptor subunit NR1,NR2A and NR2B had changed at mRNA level in the cortex of frontal lobe,neocerebellum,hippocampus and corpora striata from Pb exposure rats.

  Key wordsAlzheimer?s disease ( AD) ;NR1 subunit; NR2A subunit; NR2B subunit

    N-甲基-D-天门冬氨酸(N?methy?D-aspartate,NMDA)受体是离子型谷氨酸(Glutamatic acid)受体的一个亚型,通过对其药理、生理、病理等方面的研究已经证实,NMDA受体在生物发育过程中有着重要的生理作用,可调节神经元的活性,树突、轴突结构的发育及突触可塑性等,在神经元回路的形成及学习和记忆的突触机制中,NMDA受体也起着关键作用[1~4]。正常神经系统的发育需要兴奋性氨基酸受体活性处于最佳水平,如果NMDA受体活性过低则可能使发育延迟,而活性过高又可能导致神经元损伤或脑损伤[5~7]。本研究采用了铅暴露大鼠模型,研究NMDA受体在铅暴露大鼠学习记忆障碍中的变化,探讨其可能的机制。

  1材料与方法

  1.1  动物及模型制备40只一月龄Sprague?Dawley(SD)大鼠由沈阳医学院实验动物中心提供,雌雄不拘,体重(120±15)g,随机分成5组,各8只。铅暴露组分饲0.1%、0.2%、0.5%、1.0%用蒸馏水配制的醋酸铅溶液,对照组给予蒸馏水。3周后娩出子鼠,子鼠21天起断乳,喂以母鼠相同的饮水并单独饲养。当母鼠18个月龄时,采用朱启文等先前报道过的大鼠多功能行为训练装置[8],在术前及术后14d开始被动回避反应(passive avoidance response,PAR)训练。将铅暴露大鼠模型合格者处死取脑标本进行下列实验。

  1.2  方法

  1.2.1  Western Blot  分析 

  (1)试剂:NR1、NR2A多克隆抗体购于santa cruz公司;NR2B购于博士德生物工程有限公司;辣根过氧化物酶标记兔抗羊和羊抗兔抗体购于中山公司。(2)样品处理:取大鼠不同脑区标本,切取一部分,裂解脑组织提取总蛋白。上样,电泳,湿转至PVDF膜上,5%脱脂奶粉封闭。将PVDF膜在置于4℃NMDA受体杂交液(1:500)中摇床过夜,然后在过氧化物酶标记二抗(IgG)杂交液(1:5000)中孵育1h。最后ECL发光显影。

  1.2.2  组织总RNA的提取及RT?PCR(1)试剂:RNeasy Mini Kit试剂盒购于QIAGEN公司。RT?PCR试剂盒购于Takara公司。(2)样品处理:按试剂盒步骤提取总RNA,紫外分光光度计测定,总RNA的浓度。反转录后以β?actin为内参进行扩增。PCR扩增片断长度为:NR1?463bp,NR2A?421bp,NR2B?651bp,β?actin?445bp。取PCR产物经1.2%的琼脂糖凝胶电泳后染色,成像。

  1.3  统计学分析采用t检验进行统计学处理。

  2  结果

  2.1  Western Blot结果铅暴露大鼠海马区NR1、NR2A、NR2B亚基蛋白表达明显减弱,额叶皮质和纹状体次之,经统计学处理差异有显著性(P<0.05),新小脑区无明显减弱(P<0.5)(图1~3)。

  2.2  RT?PCR检测结果正常对照组大鼠NR1、NR2A亚基mRNA表达新小脑较强(P<0.05),其余各区无差异,NR2B亚基mRNA额叶皮质及新小脑表达较强(P<0.05)。铅暴露大鼠组三种亚基的mRNA表达均有不同程度的下调。铅暴露大鼠中各区NR1亚基mRNA表达均有所降低,其下调趋势趋于一致(P<0.05)(图4);NR2A亚基mRNA在铅暴露大鼠中额叶皮质、新小脑区、海马及纹状体的表达下调趋势均很明显(P<0.05)(图5);NR2B亚基在额叶皮质、新小脑区的表达趋势下降最显著,纹状体次之(P<0.05),海马最次之(图6)。

    3  讨论

  兴奋性氨基酸(EAA)受体有三种亚型:海人草酸(KA)受体,使君子氨酸(QA)受体和N-甲基-D-天门冬氨酸(NMDA)受体。NMDA受体通道只在学习记忆过程中才开启,因此被认为是学习记忆中的关键物质。NMDA受体不仅调节Na+、K+通道,还控制Ca2+通道。当被激活时,有跨膜Na+?K+流动,也有大量Ca2+流入胞内。Ca2+可作为第二信使,可能直接或间接使膜受体发生改变,从而改变突触效率,产生记忆[9]。

  Martin等报道,利用Western Blott方法证实16位AD患者死后大脑四个不同脑区NR1,NR2A和NR2B蛋白磷酸化水平与患者死前认知反应行为测试正相关,且NR1和NR2B在海马减少,在枕叶及尾核却未见减少[10,11]。

  Sze等报道,采用RT?PCR技术证实9位AD患者死后大脑中NR2A和NR2B亚基mRNA的水平在海马和内嗅皮质中是降低的,NR1亚基的mRNA水平在受试者的三个脑区中是相似的,在小脑,三种亚基的mRNA水平却未见减少,且这种变化是与年龄和死后延搁无关[12]。

    本实验研究结果表明,NR1,NR2A和NR2B的蛋白水平和mRNA水平在铅暴露大鼠的额叶皮质、海马、新小脑和纹状体中均是降低的。表明在铅暴露大鼠中,NMDA受体亚基NR1,NR2A和NR2B的表达在mRNA水平就已经发生了改变,为进一步研究降低的NR1,NR2A和NR2B亚基水平和学习和记忆能力降低之间的联系,探索NMDA受体亚基在学习和记忆中的作用,提供了理论依据。

 

【】
    /[1/]Bliss TVP, Collingridge GL. A synaptic model of memory: long?term potentiation in the hippocampus/[J/]. Nature,1993,361:31-39.

  /[2/]Kutsuwada T, Kashiwabuchi N, Mori H, et al. Molecular diversity of the receptor channel/[J/]. Nature,1992,358:36-41.

  /[3/]Zhou Q, Le Greves P, Regnar F,et al. Intracerebroventricular injection of the N?terminal substance P fragment SP(1-7) regulates the expression of N?methy?D?aspartate receptor NR1, NR2A and NR2B subunit mRNAs in the rat brain/[J/]. Neurosci Lett,2000,291(2):109-112.

  /[4/]Wakabayashi K, Narisaw a?Saito M, Iwakura Y, et al. Phenotypic down?regulation of glutamate receptor subunit GluR1 in Alzheimer,s disease/[J/]. Neurobiol. Aging,1999,20(3):287-295.

  /[5/]Choi DW. Glutamate neurotoxicity and diseases of the nervous system/[J/]. Neuron,1988,1:623-634.

  /[6/]Choi DW. Excitotoxic cell death/[J/]. J Neurobiol,1992; 23:1261-1276.

  /[7/]Onley JW. Excitatory transmitter neurotoxicity/[J/]. Neurobiol Aging,1994,15:259-260.

  /[8/]朱启文,任其伟,汤浩,等.智能化鼠多功能行为训练系统的研究/[J/].应用生杂志,2001,17(2):195-197.

  /[9/]Mizuta I, Katayama M, Watanabe M. Developmental expression of NMDA receptor subunits and the emergence of glutamate neurotoxicity in primary cultures of murine cerebral cortical neurons/[J/].Cell Molecular Life Sciences,1998,54(7):721-725.

  /[10/]Chun?I Sze, Hong Bi, Kleinschmiat?DeMasters BK, et al. N?Methyl?D?aspartate receptor subunit proteins and their phosphorylationstatus are altered selectively in Alzheimer's disease/[J/]. Journal of the Neurological Sciences,2001,182:151-159.

  /[11/]Lante F, Cavalier M, Cohen?Solal C, et al. Developmental switch from LTD to LTP in low frequency?induced plasticity/[J/]. Hippocampus,2006; 16(11):981-989.

  /[12/]Hong Bi, Chun?I Sze. N?methyl?D?aspartate receptor subunit NR2A and NR2B messenger RNA levels are altered in the hippocampus and entorhinal cortex in Alzheimer's disease/[J/]. Journal of the Neurological Sciences,2002,200:11-18.