乳腺癌及癌旁组织中VEGF及survivin?2B mRNA的表达意义

来源:岁月联盟 作者:黄柏强 时间:2010-07-12

【摘要】  目的: 观察乳腺癌及癌旁组织中VEGF及survivin?2B mRNA表达情况,并探讨其与临床病指标的关系. 方法: 以逆转录?聚合酶链反应(RT?PCR)法检测60例乳腺癌及癌旁5 cm正常乳腺组织标本VEGF及凋亡抑制因子survivin剪接体survivin?2B mRNA表达,半定量分析电泳结果. 结果: 在60例乳腺癌标本中VEGF及survivin剪接体survivin ?2B mRNA均高表达,与癌旁正常乳腺组织中差异有统计学意义(P<0.01), VEGF mRNA及survivin?2B在乳腺癌组织中的高表达呈正相关(r=0.576, P<0.05),同时VEGF及survivin?2B mRNA的表达与淋巴结转移有关(r=0.482,P<0.05). 结论: VEGF及survivin?2B因子为乳腺癌发生、过程中的重要因子,可对患者的及预后作预测.

【关键词】  乳腺肿瘤 基因 血管内皮生长因子类 Survivin


    0引言

    随着人民生活水平的提高,生活环境的变化及各种影像学检查的完备,乳腺癌检出率逐步提高,近年来其发病率呈明显上升趋势,已列为女性恶性肿瘤的首位. 如何尽早发现乳腺病变成为目前重要的研究课题. 肿瘤的发生和发展是一个多基因和环境因素参与的过程,研究证实肿瘤的生长有赖于血管向其提供充足的营养,为其细胞增殖、侵袭和转移提供必要的物资条件. survivin?2B是近年来发现的Survivin[抗凋亡因子,凋亡抑制家族(IAP)中的新成员]的剪接体,是survivin中最具特异性因子[1]. 我们采用RT?PCR检测乳腺癌及癌旁正常乳腺组织中VEGF及survivin?2B的扩增情况,与临床病理学指标对比分析,以探讨VEGF及survivin?2B与乳腺癌浸润和转移的关系.

    1材料和方法

    1.1材料我院2002?05/2008?03乳腺癌患者切除的癌组织及距肿瘤5 cm的癌旁非癌乳腺组织标本,能进行随访并经病理证实为乳腺癌的石蜡包埋组标本60例,均为女性,术前均未行化疗、放疗和内分泌治疗. 患者年龄25~68(平均48)岁. Ⅰ期11例,Ⅱ期39例,Ⅲ期10例. 原位癌38例,有腋窝淋巴结转移的22例. 行乳腺癌根治术12例,改良根治术48例. Trizol试剂盒(美国Invitrogen公司),M?MLV逆转录酶,RNAsin和Gotaq Green Master Mix均购自美国Promega公司. 引物由上海生工公司合成. 梯度PCR仪及凝胶成像系统Quantity One Version 4.6.3(美国Bio?Rad公司).

    1.2方法VEGF上游引物5′?GGAGCTTCAGGACATTGCTGTG?3′,下游引物为5′?GGAGGAAGGTCAACCACTCAC?3′, 扩增片段353 bp, 由于survivin共有5条条带,故设计引物控制能出现的条带为survivin及其剪接体survivin?△Ex3,survivin?2B 3条条带,共有上游引物为5′?GAGAACGAGCCAGACTTGGC?3,下游引物为 5′?CCTCTGGTGCCACTTTCAAGA?3′,扩增片段461 bp,344 bp,530 bp. GAPDH上游引物为5′?AGTCCACTGGCGTCTTCAC?3′,下游引物为5′?GCTTGACAAAGTGGTCGTTGAG?3′;扩增片段639 bp. 用Trizol试剂提取乳腺癌、癌旁组织总RNA. RNA纯度A260/A280均在1.8~2.0之间. RT反应体系:模板RNA 2 μg, Oligo?dT18 0.5 μg,70℃变性5 min,冰上冷却5 min,加入5×RT缓冲液5 μL, dNTPs 1.25 μL(each 10 mmol/L), RNasin 416.75 nkat, M?MLV 3334 nkat,1 mL/L DEPC水补至反应终体积25 μL,42℃反应60 min,72℃反应15 min,合成的cDNA置-20℃保存. PCR反应体系:在反应体系25 μL中Gotaq Green Master Mix 12.5 μL,上下游引物各0.8 μmol/L,cDNA 1.5 μL,Nuclease?Free Water 7.0 μL,入PCR仪. 反应条件:95℃预变性2 min,95℃ 30 s,56℃ 30 s,72℃ 30 s,共40个循环,72℃延伸 5 min. 取10 μL PCR产物在含有溴化已锭的10 g/L琼脂糖凝胶上电泳,5 V/cm,在凝胶成像系统下成像分析. 将GAPDH条带的吸光度值定为10,取目的基因条带与GAPDH条带吸光度值的比值作为目的基因的相对值.

    统计学处理:采用秩和检验方法,用SPSS11.5统计软件进行统计学分析.

    2结果

    2.1乳腺癌组织与癌旁5 cm正常乳腺组织中VEGF,survivin?2B转录情况由于survivin?2B及survivin?△Ex3均为Survivin的剪接体,故出现三条带(图1). VEGF及survivin?2B mRNA在乳腺癌组织中均有较高表达,在癌旁5 cm正常乳腺组织中均低表达,差异有统计学意义(P<0.05,表1).

    1: marker; 2~11: VEGF在癌旁组织的表达; 12~16: VEGF在癌组织的表达. GAPDH: 癌组织物.

    图1乳腺癌组织中VEGF及survivin?2B的表达

    表1乳腺癌与癌旁组织中VEGF及survivin?2B mRNA的表达指标〖〗组织〖〗平均秩序〖〗表达数〖〗Z*〖〗PVEGF〖〗乳腺癌〖〗47.53〖〗45〖〗-2.001〖〗0.031〖〗癌旁〖〗58.42survivin?2B〖〗乳腺癌〖〗45.62〖〗34〖〗-2.345〖〗0.040〖〗癌旁〖〗57.68*:数据非正态分布,采用秩和检验.

    2.2乳腺癌组织中Survivin及其剪接体survivin?△Ex3,survivin?2B转录与临床病指标的关系淋巴结转移与VEGF及survivin?2B的表达相关(P<0.05);临床病理学分期、肿块大小与标本中VEGF表达相关,临床病理学分期、年龄、肿块大小与标本中survivin?2B mRNA表达无关(表2).表2VEGF及survivin?2B mRNA在癌组织中表达与临床病理学指标的关系临床病理

    3讨论

    VEGF又称血管内皮细胞生长因子,特异性地作用于血管内皮,促进血管内皮细胞增殖,并在体内诱导血管形成. 我们发现,VEGF在乳腺癌组织中的阳性表达明显高于癌旁组织(P<0.05),乳腺癌组织中VEGF阳性表达率为75%. 同时VEGF的表达与肿瘤直径大小存在相关性,这与[2]存在不同,分析原因在于其采用的为免疫组化的方式,在计数上和观察上与RT?PCR的方式存在不同. 而存在淋巴结转移者VEGF的表达率明显高于无淋巴结转移者(P<0.05). 随着临床分期的升高VEGF的阳性率逐渐上升(P<0.05). 这些表明VEGF在乳腺癌的进展过程中起重要作用,与肿瘤的浸润转移密切相关.

    生存素(survivin)是凋亡抑制蛋白(inhititor of apoptosis protein, IAP)家族的一个新成员,主要分布在胚胎及分化未成熟的组织,高表达于多种恶性肿瘤组织,而在终末分化的正常成熟组织中不表达[3]. 这些功能和分布特点提示生存素与肿瘤的发生、密切相关. 人的生存素基因有4个明显的(1,2,3和4)和2个隐藏的(2B和3B)外显子[4]. 生存素前提RNA的选择性剪接生成了4个不同的剪接变体,导致相应的蛋白质结构发生显著变化[5-6]. survivin?2B为survivin的一个剪接变体,其保留部分内含子2作为隐蔽的外显子,导致相应的蛋白质结构发生显著的变化,因此无抗凋亡功能甚至有负调控功能[7];本研究中survivin?2B在乳腺癌组织中的阳性表达明显高于癌旁组织(P<0.05);survivin?2B与乳腺癌患者年龄及肿块大小无特异的相关性;survivin?2B与淋巴结转移相关(P<0.05). 本研究同时显示,survivin?2B表达与乳腺癌患者的临床病理学分期无关.

    总之,VEGF及Survivin剪接体survivin?2B因子是乳腺癌发生、发展过程中的重要因子,与其他预后指标联合检测可望对患者的以及预后作出更准确的预测.

  

【文献】
  [1] Ryan B, O Donovan N, Browne B, et al. Expression of survivin and its splice variants survivin?2B and survivin?Delta Ex3 in breast cancer[J]. Br J Cancer,2005, 92(1):120-124.

[2] 秦双,来俊英. COX?2,VEGF在乳腺癌组织中的表达及临床意义[J]. 医学信息. 手术学分册,2007,(8):675-677.

[3] Altierii DC. Validating survivin as a cancer therapeutic target[J]. Nat rev Cancer, 2003,3:46-54.

[4] Badran A, Yoshida A, Ishikawa K, et al. Identification of a novel splice variant of the human antiapoptosis gene surviving[J]. Biochem Biophys Res Commun, 2004,314:902-907.

[5] Gradilone A, Gazzaniga P, Ribuffo D, et al. Survivin, bcl?2, bax and bcl?x gene expression in sentinel lymph nodes from melanoma patients[J]. J Clin Oncol, 2005, 21:306-312.

[6] Kennedy SM, Odriscoll L, Purcell R, et al. Prognostic importance of survivin in breast cancer[J]. Br J Cancer, 2003,88:1077-1083.

[7] O?Driscoll L, Linehan R, Clynes M. Survivin:Role in normal cells and in pathological conditions[J]. Curr Cancer Drug Targets,2003,3(2):131-152.